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大肠杆菌测定仪的使用

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大肠杆菌测定仪是测定饮用水、食品中大肠杆菌的仪器。大肠杆菌是食品和饮用水安全的重要指标,对饮食安全有重要意义。那么大肠杆菌测定仪如何使用,如何测定大肠杆菌呢?


一、大肠杆菌测定仪操作流程


1、除去培养瓶外包装,打开其瓶盖;


2、在培养瓶中注入测试水直至100ml;


3、轻轻搅拌至培养基完全溶解,注意:不要起泡沫


4、用瓶盖将培养瓶盖紧;


5、将培养瓶放入AquasurePro3000TM测试单元中并盖好;


6、使用AC220V,DC12V,输出电流为1A的电源适配器(每台仪器均配置一个),电源适配器的一端插在仪器上,另一端插在220V电源上后,检查是否接好电源线,长按电源开关至绿灯亮,显示仪器开始正常运转。


7、在完成温孵(24小时以内,主要由使用样品决定)后,观察样品颜色变化与否,即可表明其中是否含有大肠杆菌。



二、大肠杆菌检测仪细菌的分离鉴定


1、标本:肠道外感染取中段尿、血液、脓液、脑脊液等,腹泻者取粪便。

2、分离培养与鉴定:粪便标本直接接种肠道杆菌选择性培养基。血液需先经肉汤增菌,再转种血琼脂平板。其他标本可同时接种血琼脂平板和肠道杆菌选择性培养基。37℃孵育18~24小时后,观察菌落并涂片染色镜检。采用一系列生化反应进行鉴定。肠致病性大肠杆菌须先作血清学定型试验。必要时检定肠霉毒素。

泌尿系统除确定大肠杆菌外,还应计数,每毫升尿含菌量≥100,000时,才有诊断价值。


三、大肠杆菌检测仪卫生细菌学检查


大肠杆菌不断随粪便排出体外,污染周围环境和水源、食品等。取样检查时,样品中大肠杆菌越多,表示样品被粪便污染越严重,也表明样品中存在肠道致病菌的可能性越大。故应对饮水、食品、饮料进行卫生细菌学检查。

1、细菌总数:检测每毫升或每克样品中所含细菌数,采用倾注培养计算。ZG规定的卫生标准是每毫升饮水中细菌总数不得超过100个。

2、大肠菌数指数:指每立升中大肠菌群数,采用乳糖发酵法检测。ZG的卫生标准是每1000ml饮水中不得超过3个大肠菌群;瓶装汽水、果汁等每100ml大肠菌群不得超过5个。


四、大肠杆菌检测仪食品检测方法


大肠菌群MPN 计数法


1、样品的稀释


1.1 固体和半固体样品:称取25 g 样品,放入盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,

8000 r/min~10000 r/min 均质1 min~2 min,或放入盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋

中,用拍击式均质器拍打1 min~2 min,制成1:10 的样品匀液。

1.2 液体样品:以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶

(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10 的样品匀液。

1.3 样品匀液的pH 值应在6.5~7.5 之间,必要时分别用1 mol/L NaOH 或1 mol/L HCl 调节。

1.4 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL,沿管壁缓缓注入9 mL 磷酸盐缓冲液

或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头不要触及稀释液面),振摇试管或换用1 支1 mL 无菌

吸管反复吹打,使其混合均匀,制成1:100 的样品匀液。

1.5 根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释

1 次,换用1 支1 mL 无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15 min。


2、初发酵试验


每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3

管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1mL(如接种量超过1 mL,则用双料LST肉汤),36

℃±1 ℃培养24 h±2 h,观察倒管内是否有气泡产生,24 h±2 h产气者进行复发酵试验,如未产气则继续

培养至48 h±2 h,产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。


3、复发酵试验


用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环,移种于煌绿乳糖胆盐肉汤(BGLB)管中,36 ℃±1

℃培养48 h±2 h,观察产气情况。产气者,计为大肠菌群阳性管。


4、大肠菌群Z可能数(MPN)的报告


按3确证的大肠菌群LST阳性管数,检索MPN表(见附录B),报告每g(mL)样品中大肠菌群的

MPN值。


五、大肠菌群平板计数法


1、样品的稀释


按上一方法稀释


2、平板计数


2.1 选取2个~3个适宜的连续稀释度, 每个稀释度接种2个无菌平皿,每皿1 mL。同时取1 mL生理盐

水加入无菌平皿作空白对照。

2.2 及时将15 mL~20 mL冷至46 ℃的结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)约倾注于每个平皿中。小心

旋转平皿,将培养基与样液充分混匀,待琼脂凝固后,再加3 mL~4 mLVRBA复盖平板表层。翻转平

板,置于36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h。


3、平板菌落数的选择


选取菌落数在15 CFU~150 CFU 之间的平板,分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。

典型菌落为紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落直径为0.5 mm 或更大。


4、证实试验


从VRBA 平板上挑取10 个不同类型的典型和可疑菌落,分别移种于BGLB 肉汤管内,36 ℃±1 ℃

培养24 h~48 h,观察产气情况。凡BGLB 肉汤管产气,即可报告为大肠菌群阳性。


2004-11-01 浏览次数:2574次
本文来源:https://www.yiqi.com/daogou/detail_1338.html
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