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琼脂糖凝胶电泳是用琼脂或琼脂糖作支持介质的一种电泳方法。对于分子量较大的样品,如大分子核酸、病毒等,一般可采用孔径较大的琼脂糖凝胶进行电泳分离。
常见问题:
问题:条带缺失
原因一:DNA条带分子量过大
解决方法:使用脉冲凝胶电泳。
原因二:分子量接近的DNA条带没有分开
解决方法:选择适当的凝胶浓度进行电泳。
原因三:电泳缓冲液使用不当
解决方法:SD和TBE缓冲液适于分析较小分子量的DNA片段,大片段分子不能完全分离;TAE缓冲液不适于分离很小的DNA片段。
原因四:电泳时间过长或电压过高,DNA走出凝胶
解决方法:缩短电泳时间,调整电压。
原因五:电极插反,DNA走出凝胶
解决方法:正确连接电极方向。
问题:条带大小不正确
原因一:核酸降解或形成聚合物
解决方法:加热处理或重新制备样品。
原因二:λDNA酶切Marker的cos位点复性
解决方法:电泳前65°C加热5分钟,冰上冷却5分钟以后上样。
原因三:相同分子量的DNA片段由于结构或序列的差异而有不同的迁移率
解决方法:判断DNA分子是否有特殊结构,如缺口、超螺旋、二聚体等;富含AT碱基的DNA迁移率比同分子量富含GC碱基的DNA片段慢。
原因四:梳子变形,点样孔不在同一水平线上
解决方法:使用完好的梳子制胶。
问题:带型异常
原因一:不同样本的上样条件不同
解决方法:选用相同的上样缓冲液,上样量尽可能接近
原因二:上样量过大或过小
解决方法:选择合适大小的上样孔,样品应完全覆盖点样孔底部
原因三:核酸样品纯度差,含有DNA结合蛋白或高浓度的盐份
解决方法:酚/仿抽提或乙醇沉淀去除蛋白、盐份等杂质。
原因四:电泳缓冲液未完全浸没凝胶
解决方法:上样和电泳时,确保缓冲液始终能完全覆盖凝胶。
原因五:电压过高或电泳时间过长致使凝胶过热和DNA变性
解决方法:根据凝胶大小和电泳缓冲液类型,使用适当的电压进行电泳。
原因六:凝胶中加入EB造成染色不均
解决方法:加入EB时充分混匀或电泳结束后再染色。
原因七:凝胶中有气泡或污染物
解决方法:使用纯水和洁净容器制胶;缓慢灌胶,并赶除气泡。
问题:DNAMarker降解
原因一:核酸酶污染
解决方法:每次吸取时更换灭菌枪头,勿将电泳缓冲液带入管中;用后密闭4°C保存。
原因二:保存不当
解决方法:4°C或-20°C保存,避免多次反复冻融;不可加热。
问题:DNAMarker无法正确分离
原因一:琼脂糖质量差
解决方法:使用质量可靠的琼脂糖制胶。
原因二:电泳缓冲液多次使用后失效
解决方法:更换缓冲液。
问题:条带黯淡
原因一:核酸浓度过低
解决方法:增加上样量。
原因二:核酸降解
解决方法:使用不含核酸酶的试剂和耗材制备样品。
原因三:DNA条带被示踪染料掩盖
解决方法:提高上样量;避免使用与目的片段迁移率相同的示踪染料。
问题:条带模糊或弥散
原因一:电泳缓冲液多次使用后失效
解决方法:更换缓冲液。
原因二:核酸部分降解
解决方法:使用不含核酸酶的试剂和耗材制备样品。
原因三:核酸样品纯度差,含有DNA结合蛋白或高浓度的盐份
解决方法:酚/仿抽提或乙醇沉淀去除蛋白、盐份等杂质
原因四:电压过低,电泳时间过长
解决方法:根据凝胶大小和电泳缓冲液类型,使用适当的电压进行电泳。
原因五:染色时间过长或拍照前放置过久,DNA条带弥散
解决方法:电泳结束后及时观察、拍照。
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