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动物足底热刺痛仪

联系方式:玉研工程师021-54377179

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详细介绍

足底热刺痛主要通过Hargreaves检测动物缩足潜伏期PWL

疼痛甩尾和冷热板实验虽是急性疼痛热阈值的经典测量方法,这两种实验至今仍然被药理学研究采用。但这两种方法都有一些局限性,没有在痛觉过敏的行为反应研究中得到运用。


足底测试代表了一种先进的实验方法,它集合了疼痛过敏测试的优点

· 实验时,受试动物无拘束,可自由活动;

· 实验数据记录是仪器自动感应完成的,无需人为判断和记录;

· 通过聚焦红外光源于动物足底,按下开关,等待动物缩回受测足爪,仪器自动记录红外光强度和持续时间;

· 红外光源设置了一个特殊的过滤器,能够过滤掉可见光谱,防止可见光干扰动物,影响实验结果;

· 带自检装置:反馈电路能够进行自检,能有效避免错误的实验环境;

· 实验数据会显示在液晶屏上,数据可导入U盘,或通过USB数据线导入至电脑。

· 文献引用量超过2000足底热刺激设备

· 数据在前板上显示,可以通过USB传送到电脑上,USB储存设备和软件都包含在标准的配件包里,

型号:37370


产品特点:
· 可自动或手动记录爪缩回时间,不需要视觉评分,无差错,测量精确
· 触摸屏控制所有功能和结果查看
· 配备USB接口,可单独工作,也可连接电脑使用
· 带数据统计软件,可将CSV文件从直接导出到USB
· 爪缩回潜伏期的分辨率为0.1s
· 红外光强度01-99 级间可调
· 可选配红外热辐射校准仪用于校准红外光源
· 6只大鼠或12只小鼠同时进行实验



主机及测试光源


主要参数:

· 操作方式:按键
· 数据读取:液晶屏显示
· 红外光强度:01-99 级间可调
· 时间分辨率:0.1s
· 红外灯泡:Halogen "Bellaphot", Mod. 64607 OSRAM, 8V-50W
· 数据转移:闪存
· 电源:85-264 VAC, 50-60Hz
· 工作温度:15°- 30°C
· 噪音:< 70dB
· 校准:红外辐射计
· 规格:85x40x35 cm
· 鼠笼:尺寸20x20x14cm,数量3个
· 净重:13.0kg
 


可选配Durham大鼠束缚器,配合足底热点仪,用于大鼠下颌部三叉神经痛测试。


刺激强度值(红外热辐射值)对照表

(单位:mW/cm2

刺激强度010203040506070809099
标准值辐射值21±167±10103±10135±7165±7190±1219±7245±7270±10295±10317±20


主要配置清单


37370

足底测试仪 (Hargreaves test), 标准套件

37370-001

控制主机

37370-002

探头

37000-003

工作台

37370-327

支架

37000-006

模块式动物围栏 (No. 3 Modules M-S 085)

37370-005

Framed Glass Pane

E-AU 041

存储卡,包含以下

37370-302 安装说明

52050-10 CUB 数据采集软件包

52010-323

USB 数据线

备件

E-HR 002

替换灯泡 (Halogen "Bellaphot", Mod. 64607 OSRAM, 8V-50W)



选配:

37300

红外热辐射校准仪

37370-278

附加实验原件,包括玻璃面板和动物束缚器

37100

大鼠束缚器,用于测试下颌部三叉神经痛

37000-145

面板内嵌式打印机

57145

微型打印机


可选配:红外热辐射测量仪


方法学文献:

1.Friščić, Jasna, et al. "The complement system drives local inflammatory tissue priming by metabolic reprogramming of synovial fibroblasts." Immunity 54.5 (2021): 

1002-1021. doi:10.1016/j.immuni.2021.03.003

2.Boyd, Jacob T., et al. "Elevated dietary ω-6 polyunsaturated fatty acids induce reversible peripheral nerve dysfunction that exacerbates comorbid pain conditions." 

Nature metabolism 3.6 (2021): 762-773.doi: 

3.Defaye, Manon, et al. "The neuronal tyrosine kinase receptor ligand ALKAL2 mediates persistent pain." The Journal of clinical investigation 132.12 (2022).doi: 

10.1172/JCI154317 

4.Liu, Shijia, et al. "Divergent brainstem opioidergic pathways that coordinate breathing with pain and emotions." Neuron 110.5 (2022): 857-873. doi:10.1016/j.neuron.2021.11.029

5.Powell, Rasheen, et al. "Inhibiting endocytosis in CGRP+ nociceptors attenuates inflammatory pain-like behavior." Nature Communications 12.1 (2021): 5812. 

10.1038/s41467-021-26100-6

6.Cheong, Hogyun, et al. "Sutureless neurorrhaphy system using a macrophage-polarizing in situ visible light-crosslinkable adhesive protein hydrogel for functional 

nerve regeneration." Chemical Engineering Journal 445 (2022): 136641. doi:10.1016/j.cej.2022.136641

7.Llorca-Torralba, Meritxell, et al. "Pain and depression comorbidity causes asymmetric plasticity in the locus coeruleus neurons." Brain 145.1 (2022): 154-167. doi: 

10.1093/brain/awab239

8.Sohn, Hee Su, et al. "Tolerogenic nanoparticles induce type II collagen‒specific regulatory T cells and ameliorate osteoarthritis." Science Advances 8.47 (2022): 

eabo5284.doi: 10.1126/sciadv.abo5284

9.Fotio, Yannick, et al. "NAAA-regulated lipid signaling governs the transition from acute to chronic pain." Science advances 7.43 (2021): eabi8834.doi:10.1126/sciadv.abi8834 

10.Kolbinger, Anja, et al. "Eosinophil‐derived IL‐4 is necessary to establish the inflammatory structure in innate inflammation." EMBO Molecular Medicine 15.2 

(2023): e16796.doi:


20220422221521_99033_副本 - 副本.png


产品优势
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