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ibidi 3D肿瘤模型解决方案

上海净信实业发展有限公司    2022-05-12       浏览 154 次

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肿瘤细胞在 3D 微环境中生长,与周围环境相互交流、相互作用。细胞行为在 3D 基质中培养与 2D 环境中不同。在许多情况下,3D 细胞培养设置更准确地反映了体内的状况。这包括使用球体和类器官的药物筛选,这些球体和类器官如今作为肿瘤模型是必不可少的。在分析癌细胞行为、迁移、增殖、对药物治疗的反应以及基因和蛋白质表达时,应考虑到这一点。

 

 

HT-1080 癌细胞在 3D 胶原蛋白凝胶中的侵袭。 将侵入性人纤维肉瘤癌球体 (HT-1080) 嵌入 I 型胶原蛋白大鼠尾凝胶中。 在 µ-Slide 8 孔中记录侵入凝胶基质 48 小时。 4x 物镜,明场

 

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PDAC细胞和成纤维细胞的类器官共培养。 人yi腺癌 (PDAC) 细胞系 PA-TU-8988T(绿色,用 CellTrackerTM Green 染色)和鼠成纤维细胞系 mPSC4(红色,用 CellTrackerTM Orange CMTMR 染色)在 µ-Slide Spheroid Perfusion 中的类器官共培养 . μ-Slide 覆盖有 25 μm FEP 箔,用于在直立光片显微镜期间匹配更接近水的折射率。 该图像由 MPI Muenster 的 S. Volkery 使用 M Squared Aurora Airy 光束直立光片设置获取。 样品由德国马尔堡大学的 K. Roth 提供。

 

用于 3D 癌症模型的 ibidi 解决方案

 

ibidi Collagen Type I, Rat Tail 是一种非胃蛋白酶处理的天然胶原蛋白,用于在凝胶基质中对 ECM 进行建模。其快速聚合促进了 3D 凝胶中的最佳细胞分布。

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µ-Slide Spheroid Perfusion 是一种用于长期球体培养的专用灌流小室。 3 x 7 孔中的每一个都形成了自己的微环境(niche),用于培养标本。通过孔顶部的通道进行灌注(例如,通过使用 ibidi 泵系统)可确保在整个实验过程中实现最佳营养和氧气扩散,而不会使标本暴露在显著的剪切力下。

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具有多细胞 µ-Pattern载玻片可实现空间定义的细胞粘附,用于生成球体和类器官、长期培养和高分辨率成像。确定的粘附点能够从细胞悬液中捕获所有粘附的单细胞。周围的 Bioinert 表面是完全不粘附细胞的。这迫使所有细胞在粘附点处相互聚集,从而以明确和可控的方式形成球体。

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Bioinert 是一种稳定的生物惰性表面,用于在非粘附表面上对球体、类器官和悬浮细胞进行长期培养和高分辨率显微镜检查,无需任何细胞或生物分子粘附。它目前可作为 µ-Dish 35 mm、高 Bioinert、µ-Slide 8 Well 高 Bioinert、µ-Slide 4 Well Bioinert 和 µ-Slide VI 0.4 Bioinert。


 

在 µ-Slide III 3D 灌注中,单细胞、球体或类器官可以在凝胶层中或凝胶层上培养或嵌入 3D 基质中。特殊的通道几何形状允许以低流速进行灌注(例如,当使用 ibidi 泵系统时),确保最佳的氧气和营养供应。这种设置使长达数周的长期培养成为可能。此外,薄盖玻片底部可高分辨率成像。


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µ-Slide 血管生成和 µ-Plate 血管生成 96 孔是凝胶基质上或凝胶基质中单细胞、共培养物、球体和类器官的 3D 培养和显微镜观察的简单、经济高效的解决方案。凝胶层直接连接到上面的培养基储存器,通过扩散可以快速轻松地更换培养基。对于特殊应用,还可提供带有 1.5H 玻璃底的 µ-Slide 血管生成载玻片。

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μ-Slide I Luer 3D 设计用于在具有定义剪切应力的 3D 凝胶基质上或其中培养细胞。三个孔中的每一个都可以填充凝胶,细胞可以嵌入其中。对于定义流量的应用,顶部的通道可以连接到泵(例如,连接到 ibidi 泵系统),以确保最佳的氧气和营养供应。

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参考文献:

3D Sandwich culture of squamous cell carcinoma lines using the µ-Plate Angiogenesis 96 Well

Hoque Apu, E., Akram, S. U., Rissanen, J., Wan, H., & Salo, T. (2018). Desmoglein 3 – Influence on oral carcinoma cell migration and invasion. Experimental Cell Research. 10.1016/J.YEXCR.2018.06.037


Breast tumor organoid culture in the µ-Slide Angiogenesis

Lüönd, F., Sugiyama, N., Bill, R., Bornes, L., Hager, C., Tang, F., Santacroce, N., Beisel, C., Ivanek, R., Bürglin, T., Tiede, S., van Rheenen, J., & Christofori, G. (2021). Distinct contributions of partial and full EMT to breast cancer malignancy. Developmental Cell. 10.1016/J.DEVCEL.2021.11.006


Live cell imaging of HT29 tumor spheroid co-culture with neutrophils and NET formation in the µ-Slide III 3D Perfusion

Teijeira, Á., Garasa, S., Gato, M., Alfaro, C., Migueliz, I., Cirella, A., de Andrea, C., Ochoa, M. C., Otano, I., Etxeberria, I., Andueza, M. P., Nieto, C. P., Resano, L., Azpilikueta, A., Allegretti, M., de Pizzol, M., Ponz-Sarvisé, M., Rouzaut, A., Sanmamed, M. F., … Melero, I. (2020). CXCR1 and CXCR2 Chemokine Receptor Agonists Produced by Tumors Induce Neutrophil Extracellular Traps that Interfere with Immune Cytotoxicity. Immunity. 10.1016/J.IMMUNI.2020.03.001

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