显微镜载玻片 - 产品信息 - 相关知识

2025-01-10 10:53:49显微镜载玻片: 显微镜载玻片是显微镜观察中常用的耗材，用于承载和固定待观察的样品。它通常由高质量的玻璃制成，表面平整光滑，以确保观察的清晰度和准确性。载玻片一般为长方形或正方形，尺寸适中，便于操作和观察。在使用时，将样品放置在载玻片上，再盖上盖玻片，即可在显微镜下进行观察和分析。显微镜载玻片是生物学、医学、材料学等领域中不可或缺的实验工具。

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显微镜载玻片问答

2022-07-07 17:24:44ibidi通道载玻片中贴壁细胞的消化传代|德国进口载玻片: 　　在本应用示例中，我们展示了如何从μ-Slide VI 0.4通道载玻片中洗脱培养后的贴壁细胞。该方法适用于不同规格的通道载玻片。　　1.根据实验说明将您的细胞培养到所需的汇合度。装有细胞和培养基的μ-Slide VI 0.4 　　2.从μ-Slide VI 0.4通道载玻片的通道口中取出培养基，不要吸干整个通道。　　3.用PBS或任何其他适当的缓冲液清洗两次，然后从另一端吸出。每个通道使用体积为100μl。我们建议同时使用细胞培养吸引器和移液器。如图所示，使用吸引器的尖端和移液器。µ-Slide VI 0.4的一个通道的横截面显示了PBS洗涤步骤　　4.使用细胞培养吸液器从通道中吸出全部PBS在这个步骤中，缓冲液从容器口和通道中完全去除　　5.立即用30μl分离溶液（例如胰蛋白酶/EDTA或Accutase）重新填充通道。如图所示，将移液器吸头直接放在通道的入口上。将30µl分离溶液填充到空通道中　　6.再将您的细胞放入培养箱中。由于生长面积和体积的纵横比不同，分离过程可能需要比平时更长的时间（2-3分钟）。用相差显微镜观察细胞脱离。如果没有发生分离，请增加分离溶液的浓度或使用更长的孵育时间。细胞会在几分钟后分离　　7.细胞成圆形并分离后，用100μl新鲜培养基或终止溶液冲洗每个通道分离的细胞被100µl新鲜培养基冲出通道　　8.从通道的另一端取出细胞悬液。如果还剩一些细胞，请重复冲洗步骤。　　9.收集悬浮细胞并去除或稀释分离溶液在细胞悬浮后，可以通过从通道中吸出溶液来收集

2025-02-01 12:10:12显微镜偏光在哪看: 显微镜偏光在哪看：如何正确观察偏光现象在显微镜观察中，偏光现象的应用广泛，特别是在材料科学、矿物学和生物学等领域。了解如何通过显微镜观察偏光现象，对于科研工作者和相关领域的专业人士至关重要。本文将深入探讨偏光显微镜的工作原理，以及如何使用偏光显微镜来观察不同样本中的偏光现象，并为读者提供一些实用的技巧和建议。 1. 偏光显微镜的工作原理偏光显微镜是通过使用偏光片来观察样品的偏振特性。偏光片通过限制光波的传播方向，使得光线只能沿一个特定的方向传播。当光线通过样品时，样品的结构、形态或组成物质可能会对光线进行旋转或偏折，这一现象即为偏光现象。通过对比未经过滤的自然光与经过偏光片过滤后的光，偏光显微镜可以有效地揭示样品内部的微观结构。 2. 显微镜偏光现象的观察方法在使用偏光显微镜时，首先需要安装偏光片。这些偏光片一般位于显微镜的光路中，一个在光源位置，另一个位于物镜下方。调整偏光片的角度可以实现不同程度的光线偏振，进而影响观察到的样品效果。对于透明样品，偏光显微镜尤为有效，可以清晰地显示出样品的内部结构及其物理性质，如应力、晶体结构等。 3. 如何识别偏光现象在显微镜下观察偏光现象时，样品会呈现出不同的色彩和对比度，这取决于样品的光学性质。观察时，通常需要旋转偏光片，以寻找佳的观察角度。在偏光显微镜中，偏光效应经常表现为样品表面的一些暗纹或色彩变化。通过这些变化，研究人员可以分析样品的组成物质、晶体结构及其物理特性。 4. 偏光显微镜的应用领域偏光显微镜广泛应用于多个领域。它在矿物学中用于鉴定矿石的种类、分析矿物的结构；在材料科学中，用来研究材料的内应力和缺陷；在生物学中，偏光显微镜则常用于研究细胞结构和组织。偏光显微镜不仅能揭示常规显微镜无法观察到的细节，还能提供有关材料本质的重要信息。 5. 总结与建议偏光显微镜在多个科研领域中具有重要的应用价值。了解其原理和使用方法，能够帮助专业人员更准确地观察和分析样本。在进行偏光显微镜观察时，正确的操作技巧和细心的调整偏光片角度是至关重要的，能够显著提高实验效果和观察精度。希望通过本文，您能对显微镜偏光现象的观察有更深入的理解，助力您的科研工作。偏光显微镜是一项关键的技术手段，掌握其操作要领，能够帮助我们更好地研究微观世界。

2025-02-01 09:10:16立体化显微镜名称是什么: 立体化显微镜是一种用于观察微小物体细节的先进仪器，其主要应用于生物学、医学、材料科学等领域。在本篇文章中，我们将深入探讨立体化显微镜的定义、工作原理及其在不同专业领域中的重要性。通过对比其他类型显微镜，立体化显微镜展示了其独特的三维观察能力，使得在多个学科的研究中发挥着重要作用。立体化显微镜的名称来源于其独特的三维图像呈现方式，这使得观察者可以通过立体视角对样本进行更精确的分析。与传统的光学显微镜不同，立体化显微镜通过两个物镜和两个目镜的配合，为观察者提供深度感和空间感，使得样本表面的微小细节得以更加清晰地呈现。这一特性使得它在医学诊断、电子显微学及精密工程中，尤其在活体观察和微观结构研究方面具有不可替代的优势。除了在结构上展现三维效果外，立体化显微镜的成像质量也得到显著提升。它能够在不损害样本的情况下获得高清的图像，尤其是在对样本的表面结构进行高精度分析时，具有传统显微镜无法比拟的优势。立体化显微镜的光学系统通常包括多个透镜，具备较大的景深，能够清晰显示不同层次的细节。其应用不仅局限于基础的科学研究，也广泛应用于工业生产中，特别是在电子产品制造、质量控制及生物样本的精密检测等领域。值得注意的是，立体化显微镜根据不同的观察需求可以配备不同的配件和功能。比如，荧光立体显微镜可以结合荧光标记物，以实现特定分子层次的观测；而数字化立体显微镜则可以将其观测结果实时传输到计算机，方便数据分析和存档。随着科技的不断进步，立体化显微镜的功能愈发强大，其在科研、教育及工业等多个行业的应用也日益增多。立体化显微镜是一种革命性技术，凭借其的三维观察能力，成为多个专业领域中不可或缺的分析工具。在未来，随着技术的发展，立体化显微镜将在更广泛的领域中发挥更大的作用。

2025-02-02 09:10:123d显微镜是不是体视镜: 3D显微镜是不是体视镜？在显微镜领域，许多人可能会混淆“3D显微镜”和“体视镜”这两个术语，认为它们是相同的设备。事实上，尽管它们都被用来观察物体的细节，但它们在工作原理、使用范围和成像方式上存在显著差异。本文将详细阐明这两种显微镜的区别，以帮助读者更清晰地了解它们各自的特点及应用场景。 3D显微镜的定义与特点 3D显微镜，顾名思义，是一种能够提供三维成像效果的显微镜设备。其主要功能是通过特殊的技术手段获取样品的三维结构。常见的3D显微镜有激光共聚焦显微镜和共聚焦扫描显微镜等，它们利用激光束扫描样品并通过探测反射光来重建物体的三维图像。这种显微镜的优势在于它能够精确测量物体的高度、深度等空间信息，广泛应用于生物学、材料科学以及工业检测等领域。体视镜的定义与特点体视镜（又称立体显微镜）则是一种可以通过双眼观察样品的显微镜，能够提供一定程度的立体视觉效果。它通过两个独立的光路系统，使观察者的左右眼分别接收到不同的图像，从而产生一种深度感。体视镜通常用于观察较大的物体或具有明显三维结构的样品，如电子元件、昆虫标本和植物样品等。它的放大倍率较低，通常在20倍到200倍之间，主要用于物体的粗略观察和简单操作。 3D显微镜与体视镜的区别虽然3D显微镜和体视镜在名称上都涉及“立体”或“3D”概念，但两者的原理和应用场景截然不同。3D显微镜能够提供细致的三维重建图像，适用于高精度的微观分析，特别是在需要获取样品高度和深度数据时。相比之下，体视镜更侧重于观察物体的外部结构，适用于较大的样品或需要大视野的工作环境。 3D显微镜通常需要较高的技术支持，价格也相对较高，适用于实验室和科研机构。而体视镜则更加简便，使用范围更广，适合实验教学、工程检测等领域。总结 3D显微镜和体视镜虽然都具有“立体”观测的特性，但它们的成像原理、用途和工作方式存在显著差异。3D显微镜提供了高分辨率的三维成像，适合细节分析，而体视镜则更适用于大范围的立体观察。了解这两者的不同，有助于在不同的应用场景中选择合适的显微镜设备。

2022-08-23 16:10:37免疫荧光应用-巨噬细胞在ibidi腔室载玻片，通道载玻片中的培养处理: 　　1. 基本信息　　　　下面的应用描述了小鼠巨噬细胞系RAW-264.7（生物安全等级2）在ibidi µ-Slides VI 0.4 和8孔腔室载玻片的培养方案。这是一个特殊的细胞系的例子，用于显示粘附时间，细胞密度和细胞形态的示范。本应用可根据您的具体实验要求进行调整。　　　　2. 材料　　　　在设置中应用下列材料：　　　　·RAW-264.7 (murine macrophages, CLS - Cell Lines Service, Biosafety Level 2) 　　　　·Medium: RPMI 1640 with 2 mM L-Glutamin and 10% FBS 　　　　·µ-Slide VI 0.4, ibiTreat （ibidi 80606）　　　　·µ-Slide 8 well, ibiTreat （ibidi 80826）　　　　·Accutase (PAA Laboratories GmbH) 　　　　·1x Phosphate buffered saline (PBS) 　　　　3. 细胞培养与材料制备　　　　在将细胞接种到玻片中之前，按照常规的方法培养细胞。　　　　µ-Slide VI 0.4 ：通道玻片和培养基，在37℃和5%CO2培养箱中培养过夜。这对于避免随着时间的推移出现气泡至关重要。为此，在50 ml器中填充适量的培养基，并轻轻地将瓶盖拧紧。在 µ-Slide 8孔载玻片开放孔井中，气泡可排出到大气中。　　　　拆开µ-Slide的包装，把它放在µ-Slide支架上，并在准备细胞悬浮液时同时将盖子放在 Luer 适配器/孔上。　　　　4. 播种细胞　　　　分离细胞：　　　　吸出培养瓶中的培养基，并用PBS洗涤细胞一次。每75cm² 烧瓶中加入3-5 ml的Accutase，并将烧瓶放入培养箱中以加快分离速度。如果是RAW-264.7细胞系，则大约需要8分钟。使用Accutase分离的细胞存活率更高。　　4.1. 将细胞接种到µ-Slide VI 0.4中　　　　在µ-Slide VI 0.4建议的细胞浓度：最终细胞数 0.3 x 10 5 cells/cm²，制备浓度6 x 10 5cells/ml。通过将移液器尖端直接放在通道的入口上，将30 µl细胞悬浮液填充到每个通道中。将盖子盖在玻片上，在37°C和5％CO2下孵育半小时以固定细胞。　　　　细胞贴壁后，分别用60 µl无细胞培养基填充储液池。避免将移液器吸头直接指向通道的入口。将玻片放回培养箱中。　　图1：接种后一小时，在ibiTreat µ-Slide VI 0.4（货号80606）中的RAW-264.7　　图2: 在ibiTreat µ-Slide VI 0.4中的RAW-264.7，孵育24小时后　　图3:在ibiTreat µ-Slide VI0.4中的RAW-264.7，培养四天后　　　　4.2 将细胞播种在µ-Slide 8 well 中　　在µ-Slide 8 well建议的细胞浓度：最终细胞数 0.3 x 10 5 cells/cm² ，制备浓度 1.1 x 10 5 cells/ml。将300 µl 的细胞悬浮液注入各孔中。将盖子盖在玻片上，在37°C和5% CO2中孵育。不需要进一步添加培养基。　　图4：在ibiTreat µ-Slide 8 well(货号：80826)中的RAW-264.7，播种后1小时　　图5: 在ibiTreat µ-Slide 8 well中的RAW-264.7，孵育24小时后　　图6：在ibiTreat µ-Slide 8 well中的RAW-264.7，经过四天的培养　　　　为获得最佳的分布的匀的细胞，我们建议使用像µ-Slide VI 0.4 这样的通道载玻片。在8孔腔室载玻片中，细胞密度可能会在孔的整个表面上因点而异，具体取决于细胞播种过程中的处理。　　　　5. 免疫荧光染色　　　　像往常一样为您的细胞固定和染色。　　　　注意：在 µ-Slides 中染色时注意液体的处理　　　　µ-Slide VI 0.4 ：更换液体，先吸出两个储液池而不排空通道。如果您使用的是真空设备，请注意不要将吸头直接放在通道的入口上。用100 µl新溶液冲洗通道3次。从一侧添加新的溶液，通过通道流入另一个储液池，然后从另一侧吸出，直到两个储液池都排空。注意通道永远不要干涸！　　　　µ-Slide 8孔载玻片：在 µ-Slide 8孔中，无需特殊处理措施。像在任何其他培养皿或孔板中一样的交换液体。　　　　下文中，给出了使用以下材料对细胞核和肌动蛋白丝进行染色的示例：　　　　细胞核：DAPI（Diamidino pheylindol dihydrochlorid） SIGMA, 32670 　　　　肌动蛋白丝：Phalloidin, Alexa Fluor ® 488 Conjugate, LONZA, PA-3010 　　　　1. 用3.7% 的PFA在PBS（pH 7.4）中室温下固定细胞10分钟。　　　　2. 用PBS清洗细胞三次。　　　　3. 用Triton X 100（0.1%）孵育细胞5分钟。　　　　4. 用PBS清洗细胞三次。　　　　5. 用1%牛血清白蛋白在PBS中孵育20分钟。　　　　6. 用PBS清洗细胞三次。　　　　7. 在0.2μm浓度下用鬼笔环肽Alexa For 488孵育细胞20分钟。　　　　8. 用PBS清洗细胞三次。　　　　9. 用DAPI（0.5μg/ml）孵育细胞10分钟。　　　　10. 用PBS清洗细胞三次。　　　　11. 完全吸出通道并用ibidi封片剂重新填充。现在样品可在显微镜上观察了。保存在阴暗阴凉处可储存数周。　　图7：在 µ-Slide VI 0.4中的RAW-264.7用DAPI（细胞核、蓝色）和Phalloidin, Alexa Fluor ® 488 Conjugate（肌动蛋白丝，绿色）