智能化共聚焦高内涵成像分析系统 - 产品信息 - 相关知识

2025-01-10 17:05:48智能化共聚焦高内涵成像分析系统: 智能化共聚焦高内涵成像分析系统是集自动化、高通量、高精度于一体的成像分析平台。它采用共聚焦显微镜技术，实现细胞、组织等多层次样本的高清晰度成像。系统内置智能化分析软件，可对图像进行自动识别和定量分析，广泛应用于药物筛选、细胞生物学、病理学等领域。其高灵敏度、高分辨率及智能化分析特点，提升了研究效率与准确性。

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美谷分子仪器（上海）有限公司 3015
2023-01-21
细胞生长分析系统多功能酶标仪智能化共聚焦高内涵成像分析系统
重磅消息：MD 发布新品——ImageXpress Confocal HT.ai 智能化共聚焦高内涵成像分析系统

 美谷分子仪器（上海）有限公司 467
2021-03-04

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智能化共聚焦高内涵成像分析系统问答

2023-08-21 11:41:24热点应用丨OLED的光致发光和电致发光共聚焦成像: 要点光致发光和电致发光是有机发光二极管（OLED）视觉显示发展的重要技术。与共聚焦显微镜相结合，使用RMS1000共聚焦显微拉曼光谱仪对OLED器件的光电特性进行成像研究。光谱和时间分辨成像获得了比宏观测试更详细的器件组成和质量信息。介绍近年来，有机发光二极管（OLED）已成为高端智能手机和电视全彩显示面板的领先技术之一1。使用量的快速增长是因为OLED提供了比液晶显示器（LCD）更卓越的性能。例如，它们更薄、更轻、更灵活、功耗更低、更明亮2。在典型的OLED器件中，电子和空穴被注入到传输层中，然后在中心掺杂发光层中复合。这种复合产生的能量通过共振转移到掺杂分子中，从而使其发光。OLED发光的颜色取决于发光层中所掺杂分子的化学结构。当新的有机电致发光器件开发出来时，可以利用光致发光（PL）和电致发光（EL）光谱来表征单个元件和整个器件的光电特性。在本文中，RMS1000共聚焦显微拉曼光谱仪用于表征四种成像模式下OLED器件的光电特性：PL、EL、时间分辨PL（TRPL）和时间分辨EL（TREL）。使用共聚焦显微拉曼光谱仪来表征OLED的光谱和时间分辨特性获得了比宏观测试更详细的信息。材料和方法测试样品为磷光OLED器件，由圣安德鲁斯大学有机半导体光电研究组提供。将样品放置在冷热台（LINKAM）上，通过两个钨探针连接到器件电极上实现成像。使用RMS1000共聚焦显微拉曼光谱仪进行PL、EL、时间分辨PL（TRPL）和时间分辨EL（TREL）成像，如图1。图1 PL、TRPL、EL和TREL成像的实验装置。将装载样品的冷热台放置在显微镜样品台上，如图2所示。对于PL测试，使用532 nm CW激光器和背照式CCD探测器；对于TRPL测试，使用外部耦合的EPL-405皮秒脉冲激光器、MCS模式和快速响应的PMT。对于EL测试，使用Keithley 2450 SMU向OLED器件加电压，并用CCD探测器检测；对于TREL测试，使用Tektronix 31102 AFG向OLED加一系列短脉冲电压，使用MCS模式测试每个脉冲下的衰减。图2 (a)安装在RMS1000上的冷热台；(b) OLED器件电致发光宽场成像。测试结果与讨论大面积光致发光和电致发光光谱成像OLED首次采用PL和EL光谱相结合的方法进行研究。当使用共聚焦显微拉曼光谱仪成像时，可以表征材料在整个器件中的分布以及在发光强度和颜色均匀性方面的整体质量。图3中的PL成像和相应的光谱提供了器件上4个区域发光层分布的信息，还显示了电极的位置。图3 (a)OLED器件的PL光谱强度成像；(b)a中标记的点1和点2的PL光谱。白色和灰色代表PL强度，显示了有机发光层的位置。灰色区域为发光层被顶部电极覆盖的位置。在顶部电极穿过发光层的地方，PL强度降低为未覆盖区域强度的一半以下。这是由于顶部电极材料削弱了激光强度和光致发光强度。对于EL成像，钨探针连接到与区域2相交的电极上。图4中得到的EL图像和相应的光谱表明了EL发光仅发生在区域2中的发光层与电极重叠的区域。在PL成像中，空间分辨率主要取决于样品上激光光斑的大小。而在EL成像中，由于没有激光，因此是通过改变共焦针孔直径来改变空间分辨率（将针孔直径减小到25 μm）。图4 (a)OLED器件的EL光谱强度成像；(b)a中标记的点1和点2的EL光谱。EL强度在整个有源像素上不均匀，这对器件的质量有影响。在区域外边缘有两个（白色）垂直条带，强度比其余部分强。此外，存在许多EL强度降低的非发光区域。这表明器件有缺陷，理想情况下，OLED将在每个像素上呈现出密集和均匀的发光。高分辨率光致发光和电致发光光谱成像为了进一步研究，使用PL和EL对EL有源像素上的较小区域（图5a和图5b）进行高分辨成像。图5b网格内的上部区域是发光层与电极重叠的地方，下部区域是单独的发光层。图5c为 PL强度成像，再次表明被电极覆盖的发光层PL强度小于未覆盖的发光层。PL峰值波长图像（图5d）表明，有电极覆盖的发光层与未覆盖的发光层（611 nm）相比，PL发射峰发生红移（620 nm）。峰值波长的变化表明在不同的区域中能级不同。图5 (a) OLED器件电致发光宽场成像；(b)a网格内的高分辨率宽场成像；(c)PL强度成像；(d)相同区域的PL峰值波长成像；(e)EL强度成像；(f)相同区域的EL峰值波长成像。EL成像显示，与其余部分相比发射强度较弱的缺陷（图5e）波长发生明显红移（图5f）。这是由于缺陷处的EL能带的信号强度降低以及在662 nm处EL能带信号强度同时增加引起的。另外，在EL有源区域的最底部的区域中，发生蓝移，这与在PL图像上看到的波长变化一致。高分辨率时间分辨光致发光和电致发光成像为获得额外信息，在同一区域进行TRPL和TREL成像，如图6所示。分别用激光脉冲和电脉冲，在MCS模式下测试614 nm处OLED的PL和EL衰减。利用单指数模型拟合衰减曲线。在图6a的TRPL成像中，EL活性区域（上部区域）中的PL寿命比EL非活性区域（下部区域）中的PL寿命短大约200 ns。如图6c所示，分别为800 ns和600 ns。这里观察到与图4中PL强度和波长图像的类似梯度，沿图向下方向的发射强度增强，并且发生了蓝移。因此，根据TRPL数据可得：当光激发时，通过掺杂带可获得不同的能级。在图6b中的TREL成像中，整个区域的寿命相似，大约为470 ns。发现EL寿命显著短于相同区域的PL寿命。图6 (a)OLED的时间分辨PL成像；(b)OLED的时间分辨EL成像；(c)a中选定区域的PL衰减曲线；(d)b中图像的EL衰减曲线。结论RMS1000共聚焦显微拉曼光谱仪用于测试OLED器件的PL、EL、TRPL和TREL成像。这些不同的成像模式提供了关于发光层和电极在整个器件中位置的详细信息，在工作条件下器件的发光强度和颜色均匀性，以及关于PL和EL过程中带隙能量的相对信息。参考文献1. A. Salehi et al., Recent Advances in OLED Optical Design, Adv. Funct. Mater., 2019, 29, 1808803, DOI: 10.1002/adfm.201808803.2. J. M. Ha et al., Recent Advances in Organic Luminescent Materials with Narrowband Emission, NPG Asia Mater., 2021, 13, 1–36, DOI: 10.1038/s41427-021-00318-8.天美分析更多资讯

2023-05-26 10:03:56PhenoTron®-XYZ植物表型成像分析系统: PhenoTron®-XYZ植物表型成像分析系统，是易科泰生态技术公司基于国际先进光谱成像传感器技术和自主研发的XYZ植物表型自动扫描平台，设计生产的一款适用于实验室或温室高通量植物表型分析系统：国际知名高光谱成像技术公司Specim（芬兰）高光谱成像传感器Thermo-RGB©红外热成像与可见光成像融合分析技术，可实现遥控和在线图传FluorCam叶绿素荧光成像技术平台采用STP（Sensor-To-Plant）技术和在线视觉监控可选配基于蒸渗仪技术的iPOT数字化培养盆，全面监测重量变化、土壤水分与温度，及叶片温度、叶绿素荧光、茎流、光合作用等生理生态参数可选配台面式表型分析平台，XYZ安装在样品平台上，特别适合实验室组培苗和种苗表型分析、种质资源检测等应用于种苗与组培苗表型检测、作物表型研究分析、植物生理生态研究、光合生理研究、种质资源检测、胁迫与抗性评估与筛选等自左至右依次为：PhenoTron®-XYZ植物表型成像分析系统（可移动）、台面式PhenoTron®-XYZ植物表型成像分析系统、绿豆种苗高光谱成像分析（PRI）主要技术指标：1)平台采用STP技术，嵌入式主控系统，全中文操作界面，触控屏+PC端GUI软件双重控制，可无线控制2)XYZ三轴全自动运行，精准定位扫描成像分析，运行精度1mm3)支持组合命令，可自定义Protocols，自动执行XYZ三轴移动、停止、光源开闭、快门触发等4)支持位置记忆，可一键注册、记录、保存、读取XYZ坐标信息，自动移动精准定位采集Thermo-RGB及FluorCam叶绿素荧光成像数据5)机器视觉监控：监控镜头经过算法校准，在线监视全域植物状态和自动扫描成像，通过注册XYZ自动定位采集RGB、红外热成像、FluorCam叶绿素荧光成像数据，并在线监控全过程6)标配台面式XYZ三轴有效行程：X轴80cm，Y轴有效扫描长度180cm，Z轴可升降范围30cm7)400-1000nm高光谱成像：a)光谱通道448，具备MROI功能，根据需求自由选择感兴趣光谱波段，减少数据冗余b)帧率：330FPS（满帧），适应多种测量场景，尤其对容易摆动的植物，保证最佳的成像效果c)光谱分辨率 FWHM：5.5nmd)空间分辨率：1024像素e)信噪比400:1f)分析参数：可成像测量分析作物生化、生理指标如叶绿素含量、花青素含量、胡萝卜素含量、光利用效率、叶绿素荧光指数、健康指数、覆盖度等近百种参数8)900-1700nm高光谱成像：a)光谱通道224，具备MROI功能，根据需求自由选择感兴趣光谱波段，减少数据冗余b)帧率：670FPS（满帧）c)光谱分辨率 FWHM：8nmd)空间分辨率：640像素e)信噪比1000:1f)分析参数：可成像测量分析NDNI归一化N指数、NDWI归一化水指数、MSI水分胁迫指数等9)SpectrAPP®高光谱成像分析软件：a)具备伪彩色/灰度显示、波段融合、ROI选区、光谱指数分析、光谱曲线绘制、光谱特征统计、直方图统计、结果图/表导出等功能b)可分析NDVI、PRI、DCNI、CRI、ARI、PSRI、NPQI、EVI、HI、WBI等数十种光谱指数，可根据需求定制添加光谱指数左：SpectrAPP®高光谱成像分析，右：绿豆幼苗叶绿素荧光成像分析10)Thermo-RGB成像：a)可见光-红外热成像双镜头主机，出厂黑体多点校准并附校准证书，分辨率640×512像素b)测量温度范围-25℃－150℃，灵敏度0.03℃@30℃，c)红外热成像分析软件具备调色板、差值技术、温度范围设置、等温线模式、选区分析、温度扫描、剖面温度、时间图、3D温度图、在线报告等功能d)Thermo-RGB©成像融合分析：可进行手动/自动ROI分析；光照/背光叶片长度、宽度、周长、凸包面积、圆度等形态分析；最高、最低、平均温度、最大温差、中位数等温度分析；R/G/B、H/S/V、绿视率等颜色分析，具备温度直方图统计、路劲分析、温度转换、图/表导出等功能e) Thermo-RGB遥控并可在线图像无线传输，实时监测RGB及红外热成像画面，测量最大、最小、中心点温度信息等11)叶绿素荧光成像：a)专业高灵敏度叶绿素荧光成像CCD，帧频50fps，分辨率720×560像素，像素大小8.6×8.3µmb)3色4组LED激发光源：620nm脉冲调制测量光，620nm红色、5700K白色双色光化学光源，735nm远红光用于测量Fo’等c)光化学光最大1000µmol.m-2. s-1可调，饱和脉冲3900µmol.m-2. s-1d)可自动运行Fv/Fm、Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析、光响应曲线等protocolse)50多个叶绿素荧光自动测量分析参数，包括：Fv/Fm、Fv’/Fm’、Y(II)、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等，自动形成叶绿素荧光参数图f) 自动同步显示叶绿素荧光参数及参数图、叶绿素荧光动态曲线、叶绿素荧光参数频率直方图g) 可通过注册定位自动精准定位运行叶绿素荧光成像分析，单次成像面积35x46mmh)可对植物叶片、果实等不同组织进行叶绿素荧光成像分析i) 可选配GFP成像j) 配备便携支架和叶夹，方便独立使用

2023-05-23 12:34:04【会议预告】诚邀您参加上海站高内涵成像技术与应用研讨会: 尊敬的老师：您好！我们诚挚地邀请您参加 5 月 26 日在上海举办的高内涵成像技术与应用研讨会。本次应用研讨会旨在与科学家面对面的交流，分享使用高内涵成像和分析技术的经验，期望为相关研究领域提供有用的信息，拓展思路。高内涵成像分析系统是一种集高分辨率、自动化、智能化、高通量于一体的通用检测技术平台，其为细胞水平的研究分析提供了高效的解决方案，是创新药物研究、中药药效、肿瘤研究、神经生物学、免疫学、干细胞研究等领域的重要研究工具。此次会议我们邀请企业、科研等专家学者共聚一堂，带来 ImageXpress 高内涵成像分析系统在各研究领域最新进展和应用。我们期待您的参与，并再次感谢您的关注和支持！美谷分子仪器（上海）有限公司时间2023 年 5 月 26 日地点：上海浦东由由喜来登大酒店（上海市浦东新区浦建路 38 号）推荐到达方式：地铁 4 号线塘桥站 3 号口右转 20 米报名方式：扫一扫二维码即可报名参会扫一扫二维码即可报名参会

2022-12-04 19:40:01高内涵应用案例——线粒体动力学检测和表型分析: 引言新陈代谢是生物体内进行的化学变化的总称，是生物最基本的生命活动过程。细胞从环境汲取能量、物质，在内部进行各种化学变化，维持自身高度复杂的有序结构，保证生命活动的正常进行。作为细胞的“能量工厂”，线粒体在维持能量稳态方面发挥重要作用，可以调控蛋白质、脂质、溶质和代谢物产物的进出，并保护细胞质免受有害线粒体产物的影响。线粒体通过不断的分裂和融合，维持线粒体形态、分布和数量，维持细胞稳态，该过程被称为线粒体动力学。线粒体自噬是机体清除细胞内功能异常的线粒体的过程，是线粒体质量控制的主要机制。线粒体动力学的病理改变可导致生物能量功能受损和线粒体介导的细胞死亡，并与多种病理机制相关，包括缺血性心肌病，糖尿病，肺动脉高压，帕金森氏病，亨廷顿氏病，骨骼肌萎缩症、阿尔茨海默病等。线粒体大小和形状取决于它们在细胞内的位置以及不同细胞对能量的需求。当线粒体发生损伤时，它的形态和完整性会发生改变，如线粒体的数量、大小、长度和形状等。线粒体形态、结构和功能的检测对于了解线粒体的稳态以及功能状态有重要意义。高内涵成像分析系统非常适合进行线粒体表型和结构的研究。共聚焦成像和水镜可以提高成像质量并更好地显示线粒体结构，高内涵的图像分析工具可以帮助科研工作者获得不同表型的数字特征，线粒体表型和结构重排的分析模块可用于线粒体动力学为基础的细胞研究。结果展示使用不同浓度的化合物，包括氯喹（抑制线粒体循环），鱼藤酮（氧化磷酸化抑制剂）和缬氨霉素（钾离子载体）处理 PC12（人神经母细胞瘤细胞）。将活细胞用线粒体染料 MitoTracker Orange 和 Hoechst 进行染色，利用 ImageXpress Micro Confocal 系统（Molecular Devices）进行成像，使用共聚焦模式和 40X 水镜拍摄活细胞的图像，分辨单个线粒体并检测线粒体形态变化。使用 MetaXpress 高内涵图像采集和分析软件中的 Custom Module Editor（自定义模块编辑器）分析图像，使用“Granularity”模块和“Find Fibers”模块识别圆形颗粒和细长的线粒体（图 1）。图 1 .线粒体形状的表型分析。Molecular Devices 高内涵成像分析系统适用于各种细胞模型中化合物的药物开发或毒性评估。不同化合物处理会导致线粒体形态变化，膜电位的损失、以及细胞的程序性死亡等。MetaXpress 软件非常适合进行线粒体形态的测定，可以定义每个对象的数量、面积、强度、长度和形状（表1，2）。使用具有共聚焦模式的 40X 水镜对细胞进行成像，MetaXpress 自定义模块编辑器分析图像（图 2）。这些检测结果可以计算剂量反应和各种化合物的有效浓度，以及用数字来表征线粒体结构动力学（图 3）。图 2 .化合物对线粒体的作用。使用MitoTracker Orange对线粒体进行染色（黄色），对照组（A）、缬霉素（B）、鱼藤酮（C）。使用特定浓度的化合物（氯喹，鱼藤酮和缬氨霉素）处理 PC12 细胞，对细胞进行染色和成像。通过图像分析将线粒体结构确定为“纤维”（顶部）或“颗粒”（中部），底部为线粒体染色后荧光强度的变化。EC50的值取决于四个浓度依赖性复本和参数曲线的拟合（图 3）。图 3 .使用氯喹（绿色），鱼藤酮（红色）和缬氨霉素（蓝色）处理 PC12 细胞。EC50的值取决于四个浓度依赖性复本和参数曲线的拟合。在分析过程中，我们比较了水镜和空气镜对图像质量和分析的影响。结果显示，使用水镜可以提高图像质量，并且通常会导致 Z' 值增加（表 3 ）。图 4 显示了使用自定义模块编辑对线粒体表型进行计数和分析，以评估线粒体的健康、代谢、循环、复合效应和疾病状态等。并且，自定义模块编辑可以针对特定的细胞类型或疾病模型进行进一步的调整和修改。表 1 .用图 3 所示的曲线定量 EC50。表 2 .不同的对照和化合物处理方法的比较。上面四列数据分别是对照，10 um 的氯喹，300 nm 的鱼藤酮，和 10 nm 的缬氨酸霉素。表 3 .与空气镜相比，水镜可以提高图像质量，获得更高的Z’值。图 4 .自定义模块编辑器（CME）。总结Molecular Devices 高内涵成像分析系统适用于各种细胞模型中化合物的药物开发或毒性评估。使用高内涵成像和高级图像分析的线粒体动力学分析方法不仅可以量化线粒体的表型变化，而且这种多参数方法也可用于研究正常和病理结构变化以表征疾病模型或复合效应。主要特点获得高质量的图像，更好地显示线粒体形状和结构的变化以更有效、更精确的方式量化和测量线粒体的表型变化了解疾病的机制并评估各种细胞模型中的化合物毒性参考文献：[1]. Gottlieb RA, Bernstein D. Mitochondrial remodeling: Rearranging, recycling, and reprogramming. Cell Calcium, 2016, 60(2): 88–101.[2]. Yoon Y, Krueger EW , Oswald BJ , et al. The Mitochondrial Protein hFis1 Regulates Mitochondrial Fission in Mammalian Cells through an Interaction with the Dynamin-Like Protein DLP1. Molecular & Cellular Biology, 2003, 23(15):5409-5420.[3]. McLelland GL, Soubannier V, Chen CX, et al. Parkin and PINK1 function in a vesicular trafficking pathway regulating mitochondrial quality control. Embo Journal. 2014, 33(4):282-295.[4]. Twig G, Elorza A, Molina AJ, et al. Fission and selective fusion govern mitochondrial segregation and elimination by autophagy. Embo Journal. 2008, 27:433–446.[5]. Longo DL , Archer SL . Mitochondrial dynamics--mitochondrial fission and fusion in human diseases. New England Journal of Medicine, 2013, 369(23):2236-2251.[6]. Qi X, Disatnik MH, Shen N, et al. Aberrant mitochondrial fission in neurons induced by protein kinase C{delta} under oxidative stress conditions in vivo. Molecular biology of the cell. 2011, 22(2):256–265.[7]. Yu T, Sheu SS, Robotham JL, Yoon Y. Mitochondrial fission mediates high glucose-induced cell death through elevated production of reactive oxygen species. Cardiovascular Research. 2008, 79:341–351.[8]. Ong SB, Subrayan S, Lim SY, et al. Inhibiting Mitochondrial Fission Protects the Heart Against Ischemia/Reperfusion Injury. Circulation, 121(18), 2012-2022.[9]. Suen DF, Norris KL, Youle RJ. Mitochondrial dynamics and apoptosis. Genes Dev. 2008, 22:1577-590.[10]. Konopka AR, Suer MK, Wolff CA, et al. Markers of Human Skeletal Muscle Mitochondrial Biogenesis and Quality Control: Effects of Age and Aerobic Exercise Training. The Journals of Gerontology. 2014, 69(4):371-378.

2023-08-21 11:50:20激光共聚焦荧光显微镜活体荧光物质检查: 激光共聚焦显微镜，简称CLSM（Confocal Laser Scanning Microscopy），是一种利用激光共振效应进行成像的显微镜。它通过使用激光束扫描样品的不同层面，将所得到的图像合成成一幅清晰的三维图像。与传统显微镜相比，激光共聚焦显微镜具有更高的分辨率和更强的穿透能力，可以观察到更加细微的结构和更深层次的物质。在活体荧光物质的检查中，激光共聚焦显微镜发挥了重要的作用。通过标记活体细胞或组织的特定结构或分子，激光共聚焦显微镜可以实时观察到这些结构或分子的活动和分布情况。在生物医学领域，它可以用于观察细胞的生长、分裂和死亡过程，研究细胞信号传导和分子交互作用等。在药物研发中，它可以用于观察药物在活体细胞或组织中的分布情况，评估药物的疗效和毒性。此外，在神经科学领域，激光共聚焦显微镜可以用于观察神经元的活动和连接，揭示大脑的工作机制。 NCF950激光共聚焦显微镜较宽场荧光显微镜的优点：l 能够通过荧光标本连续生产薄（0.5至1.5微米）的光学切片，厚度范围可达50微米或更大。（主要优点）l 控制景深的能力。l能够从样品中分离和收集焦平面，从而消除荧光样品通常看到的焦外“雾霾"，非共焦荧光显微镜下无法检测到。（最重要的特点）l 从厚试样收集连续光学切片的能力。l 通过三维物体收集一系列图像，用于二维或三维重建。l收集双重和三重标签，精确的共定位。l 用于对在不透明的图案化基底上生长的荧光标记细胞之间的相互作用进行成像。l 有能力补偿自发荧光。耐可视共聚焦成像效果图尼康共聚焦成成像效果图NCF950激光共聚焦显微镜应用，共聚焦显微镜在以下研究领域中应用较为广泛：1、细胞生物学：细胞结构、细胞骨架、细胞膜结构、流动性、受体、细胞器结构和分布变化、细胞凋亡；2、生物化学：酶、核酸、FISH、受体分析3、药理学：药物对细胞的作用及其动力学；4、生理学：膜受体、离子通道、离子含量、分布、动态；5、遗传学和组胚学：细胞生长、分化、成熟变化、细胞的三维结构、染色体分析、基因表达、基因诊断；6、神经生物学：神经细胞结构、神经递质的成分、运输和传递；7、微生物学和寄生虫学：细菌、寄生虫形态结构；8、病理学及病理学临床应用：活检标本的快速诊断、肿瘤诊断、自身免疫性疾病的诊断；9、生物学、免疫学、环境医学和营养学。NCF950激光共聚焦显微镜配置NCF950激光共聚焦配置表激光器激光405 nm、488 nm、561 nm、640 nm探测器波长：400-750nm，探测器：3个独立的荧光检测通道；1个DIC透射光检测通道扫描头最大像素大小：4096 x 4096 扫描速度：2 fps（512 x 512像素，双向），18 fps（512 x 32像素，双向），图像旋转: 360°扫描模式X-T, Y-T, X-Y, X-Y-Z, X-Y-Z-T针孔无级变速六边形电动针孔；调节范围：0-1.5毫米共焦视场φ18mm内接正方形图像位深12bits配套显微镜NIB950全电动倒置显微镜光学系统NIS60无限远光学系统（F200)目镜(视野)10×(25)，EP17.5mm，视度可调-5～+5，接口Φ30观察镜筒铰链式三目观察镜筒，45度倾斜，瞳距47-78mm，目镜接口Φ30，固定视度；1）目/摄切换：（100/0,50/50,0/100)；2）目视/关闭目视/可调焦勃氏镜NIS60物镜10×复消色差物镜，NA=0.45 WD=4.0 盖玻片=0.1720×复消色差物镜，NA=0.75 WD=1.1 盖玻片=0.1760×半复消色差物镜，NA=1.40 WD=0.14 盖玻片=0.17 油镜100×复消色差物镜，NA=1.45 WD=0.13 盖玻片=0.17 油镜物镜转换器电动六孔转换器（扩展插槽），M25×0.75聚光镜6孔位电动控制：NA0.55，WD26；相衬(10/20,40,60选配）DIC（10X，20X/40X）选配.空孔照明系统透射柯拉照明，10W LED照明；落射照明：宽场光纤照明6孔位电动荧光转盘（B，G，U标配）；电动荧光光闸；中间倍率切换手动1X，1.5X、共焦切换机身端口分光比：左侧:目视=100：0；右侧:目视=100：0；平台电动控制：行程范围130 mm x100 mm （台面325 mm x 144 mm ）最大速度：25mm/s；分辨率：0.1μm - 重复精度：3μm。机械可调样品夹板调焦系统同轴粗微动升降机构，行程：焦点上7下2；粗调2mm/圈，微调0.002mm/圈；可手动和电动控制，电动控制时，最小步进0.01um；DIC插板10X，20X，40X插板；可放置于转换器插槽；选配控制摇杆，控制盒，USB连接线软件软件：NOMIS Advanced C图像显示/图像处理/分析2D/3D/4D图像分析，经时变化分析，三维图像获得及正交显示，图像拼接，多通道彩色共聚焦图像