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牛奶中活性蛋白的分析

发布:默克化工技术(上海)有限公司
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乳及乳制品已是我们补充优质蛋白的重要来源,也是饮食中不可或缺的部分。选择乳制品时,蛋白质的含量是关键指标。乳制品中主要含有哪些活性乳蛋白?如何分析这些乳蛋白?本文分享了一种有效测定牛奶中乳白、乳球和乳铁蛋白的分析方法,可为液态奶的工艺优化提供数据支撑。

/王象欣

 

 

牛奶蛋白质总量中大约20%[1]是乳清蛋白。乳清蛋白主要包括β-乳球蛋白(β-Lg,占乳清蛋白50%)、α-乳白蛋白(α-Lac,占乳清蛋白25%[2]其中β-Lg包含β-Lg Aβ-Lg B两种遗传变异体。常乳中乳铁蛋白(Lf)的含量受奶牛品种和季节性的影响很大。[3] [4]

 

乳铁蛋白(Lf)是一种能够与铁结合的糖蛋白,可以促进肠道对铁元素的吸收,提高机体铁含量[11]Lf还被称作免疫因子,具有抗.菌[12]、抗病毒[13]、抗氧化[14]和调节机体免疫力[15]等作用。GB 14880-2012《食品营养强化剂使用标准》将乳铁蛋白列为了新型营养强化剂,并规定了其在相关乳制品中的含量标准。

本研究采用超gao效液相色谱法(UPLC),测定牛奶样品中乳铁蛋白(Lf)α-乳白蛋白(α-Lac)β-乳球蛋白(β-Lg)的含量α-乳白蛋白(α-Lac)β-乳球蛋白(β-Lg)和乳铁蛋白(Lf)的检测方法参照GB/T 27417-2017《合格评定 化学分析方法确认和验证指南》对方法进行了确认,满足标准各项要求。

 

一、材料与方法

1试剂与耗材

本实验所用试剂乙腈(CH3CN)和三氟乙酸(CF3COOH)为色谱纯级别;

氯化钠(NaCl),磷酸二氢钠(NaH2PO4),磷酸氢二钠(Na2HPO4),冰醋酸为分析纯;

所用水由Milli-Q超纯水仪(默克公司)提供的符合GB/T 6682规定的一级水。

肝素亲和柱(4℃冰箱内储存),规格为1.5mg3mL0.22μm聚醚砜水相滤膜。

 

2仪器与设备

超gao效液相色谱仪,配有紫外检测器;十万分之一分析天平;高速冷冻离心机;Milli-Q超纯水仪;涡旋振荡器。

 

3 标准物质

本实验所用标准物质为CRM级别,均来自于默克Supelco®品牌 Cerilliant®,其中乳铁蛋白(Lf)的标准品编号为 L-047α-乳白蛋白(α-Lac)的标准品编号为L-045β-乳球蛋白(β-Lg)的标准品编号为L-046

4 分析方法

4.1 乳铁蛋白的测定

· 称取10g(精确至0.01 g牛奶样品于100mL三角瓶中,先加入30mL结合缓冲液(84mmol/L Na2HPO416 mmol/L NaH2PO4),涡旋振荡混匀1min,将样品全部转移至容量瓶,再加入结合缓冲液定容至50mL后混匀;

· 将样本转移至离心管于4条件下以12000 r/min转速离心10 min,离心后轻轻取出中间层,上层有脂质,下面有沉淀,用大量程的移液器将中间液体部分吸出,注意不要吸取上层脂质和下层沉淀。取其中的10mL作为样品提取液。

·  肝素亲和柱先加入5 mL结合缓冲溶液84mmol/L Na2HPO416 mmol/L NaH2PO4平衡,处理完毕后加入样品提取液,待样液完全流出后,再用10 mL淋洗液42mmol/L Na2HPO48 mmol/L NaH2PO4100 mmol/L NaCl淋洗,弃去全部流出液。

· zui后用2.5 mL洗脱液(42mmol/L Na2HPO48 mmol/L NaH2PO41mol/L NaCl)洗脱,收集全部流出液,定容至3.5 mL。将收集溶液过滤膜,供液相色谱检测分析用。通过C4色谱柱(100 mm×2.1mm1.7μm300Å)进行分离。

· 梯度洗脱,流动相A为含有0.1%三氟乙酸的水溶液;流动相B为含有0.08%三氟乙酸的乙腈;梯度条件见表1所示,流速为0.3mL/min,柱温为45 ,进样量为10μL;通过紫外检测器280 nm下进行检测,样品色谱图见图1所示

1:乳铁蛋白梯度洗脱条件

时间(min

流动相A

流动相B

0

95

5

1.5

62

38

2.5

62

38

5.5

55

45

5.6

5

95

7.0

5

95

7.1

95

5

9.0

95

5

 

 

图片包含 游戏机, 画, 桌子 描述已自动生成

1 牛奶样品中Lf的色谱图

 

4.2 α-乳白蛋白和β-乳球蛋白的测定

· 5 g(精确至0.01 g)牛奶样品50mL离心管中,加入15.0mL水混匀,加入冰醋酸(约30μL)调节pH4.6±0.1左右,涡旋震荡1min,室温静置至少20min后,在10000转,4条件下离心10min

· 1mL上清液稀释10倍后,过0.22μm滤膜,上机检测。通过C4色谱柱(100 mm×2.1 mm,1.7μm,300Å)进行分离。梯度洗脱,流动相A为含有0.1%三氟乙酸的水溶液;流动相B为含有0.08%三氟乙酸的乙腈;

· 梯度条件见2所示,流速为0.3mL/min ,柱温为45 ,进样量为10μL;通过紫外检测器280 nm下进行检测,样品色谱图见图2所示。

2α-乳白蛋白和β-乳球蛋白梯度洗脱条件

时间(min

流动相A

流动相B

0

95

5

1.5

62

38

2.5

62

38

5.5

59

41

5.6

5

95

7.0

5

95

7.1

95

5

9.0

95

5

 

图片包含 屏幕截图 描述已自动生成

2 牛奶样品中α-Lacβ-Lg 的色谱图

 

二、实际样品的测定数据

牛奶样品来自11个省份、自治区、直辖市的大型超市,并结合网络,抽取试验所用样品。其中20种保质期为常温12个月的纯牛奶,20种保质期为常温6个月的纯牛奶,10ESL牛奶,15种巴氏杀菌牛奶,每种10个批次。对上述样品按照2.4所述方法进行分析,结果如表3所示。

 

3:市售样品中未变性α-Lacβ-LgLf的含量

产品

储存条件/保质期

α-Lacmg/L

β-Lgmg/L

Lfmg/L

Min.

Max.

Mean

CV%

Min.

Max.

Mean

CV%

Min.

Max.

Mean

CV%

纯牛奶

常温/12个月

63

425

195

56.8

69

365

176

50.2

<1

<1

<1

-

纯牛奶

常温/6个月

69

554

337

42.8

102

741

348

45.0

<1

<1

<1

-

巴氏奶

低温/3-9

624

963

792

14.7

1548

3557

2660

20.6

12

38

28

27.5

ESL

低温/15-22

490

728

598

12.0

1040

3281

2499

26.0

18

36

24

21.2

三、结论

经方法学验证,3种活性蛋白其线性范围内线性关系良好,方法回收率、精密度符合GB/T 27404-2008中的相关要求,该方法快速、灵敏、准确,适合牛奶样品的检测,也可为液态奶的工艺优化提供数据支撑。

 

 

参考文献:

[1] TAMIME A Y. Milk processing and quality management[M]. Oxford: Blackwell Publishing Ltd., 2009: 25-36.

[2] McSWEENEY P L H, O’MAHONY J A. Advanced dairy chemistry[M]. New York: Springer Science, 2015: 211-295.

[3] Riechel P , Weiss T , Weiss M , et al. Determination of the minor whey protein bovine lactoferrin in cheese whey concentrates with capillary electrophoresis[J]. Journal of Chromatography A, 1998, 817(1-2):187.

[4] Harmon R J , Schanbacher F L , Ferguson L C , et al. Concentration of lactoferrin in milk of normal lactating cows and changes occurring during mastitis.[J]. American Journal of Veterinary Research, 1975, 36(7):1001.

[5] Salamone D , Lino Barañao, Santos C , et al. High-level expression of bioactive recombinant human growth hormone in the milk of a cloned transgenic cow[J]. Journal of Biotechnology, 2006, 124(2):469-472.

[6] Hattori M , Watabe A , Takahashi K . .BETA.Lactoglobulin Protects. BETA.Ionone Related Compounds from Degradation by Heating, Oxidation, and Irradiation[J]. Bioscience Biotechnology and Biochemistry, 1995, 59(12):2295-2297.

[7] Zimet P , Livney Y D . Beta-lactoglobulin and its nanocomplexes with pectin as vehicles for ω-3 polyunsaturated fatty acids[J]. Food Hydrocolloids, 2009, 23(4):1120-1126.

[8] SHIRO  KUSHIBIKI , KOICHI  HODATE , JUNICHI  KURISAKI , et al. Effect of β-lactoglobulin on plasma retinol and triglyceride concentrations, and fatty acid composition in calves[J]. Journal of Dairy Research, 2001, 68(4):579-586.

[9] Bleck G T , Wheeler M B , Hansen L B , et al. Lactose Synthase Components in Milk: Concentrations of αLactalbumin and β1,4Galactosyltransferase in Milk of Cows from Several Breeds at Various Stages of Lactation[J]. Reproduction in Domestic Animals, 2010, 44(2):241-247.

[10] Segawa T , Sugai S . Interactions of divalent metal ions with bovine, human, and goat alpha-lactalbumins.[J]. Journal of Biochemistry, 1983, 93(5):1321.

[11] Ke C , Lan Z , Hua L , et al. Iron metabolism in infants: influence of bovine lactoferrin from iron-fortified formula[J]. Nutrition, 2015, 31(2):304-309.

[12] Wilson B R , Bogdan A R , Miyazawa M , et al. Siderophores in Iron Metabolism: From Mechanism to Therapy Potential[J]. Trends in Molecular Medicine, 2016:S1471491416301472.

[13] Wakabayashi H , Oda H , Yamauchi K , et al. Lactoferrin for prevention of common viral infections[J]. Journal of Infection and Chemotherapy, 2014, 20(11):666-671.

[14] Wang J , Bi M , Liu H , et al. The protective effect of lactoferrin on ventral mesencephalon neurons against MPP(+) is not connected with its iron binding ability.[J]. Scientific Reports, 2015, 5:10729.

[15] ArciniegaMartínez IM, CamposRodríguez R, Dragoserrano M E , et al. Modulatory Effects of Oral Bovine Lactoferrin on the IgA Response at Inductor and Effector Sites of Distal Small Intestine from BALB/c Mice.[J]. Archivum Immunologiae Et Therapiae Experimentalis, 2016, 64(1):1-7.

 

 

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https://www.sigmaaldrich.com/technical-documents/articles/biology/milk-protein-crm.html


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2020-08-03
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