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培养果蝇的瓶内总是发霉该如何改进?

jiedai65987413 2010-06-12 20:50:25 325  浏览
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全部评论(1条)

  • 狂想XXOO的岁月 2010-06-13 00:00:00
    1 如何防止培养基长霉 当环境温度不适应果蝇生长时(温度低于18℃) ,培养基接种后的7d内,特别容易长霉。要避免长霉,应注意: ①培养果蝇的器皿要严格消毒。培养瓶洗干净后,自然凉干, 再与棉塞一道进行高温干燥灭菌(120℃, 30min) 。②培养基营养要全面。果蝇培养基的种类很多,本实验室用的是玉米培养基,配方如下:水750mL煮开,加琼脂6. 2g,待琼脂溶解后加白糖62.5g,搅拌溶解后加调成糊状的玉米糊(玉米粉82. 5g,用冷水调成糊状) ,煮开2~3min,加酵母粉7g,加热1~2min,搅拌均匀后,移去火源,加丙酸2mL (起杀菌防霉的作用) 。培养基稍稍冷却后,倒入已灭菌的培养基瓶中,尽量不要让培养基粘在瓶壁上,塞好棉塞,放入仍有余热的干燥箱中将瓶壁上的水蒸干。③接种时消好毒。在无菌室内接种, 如没有无菌室, 在接种前用75%酒精棉球擦双手一遍。接种后,放入适宜果蝇生长温度的培养箱中培养果蝇(温度20~25℃) ,一旦下一代成蝇孵出来后,培养基就不易长霉。 2 长霉后的处理方法 若培养基长霉后,由于霉菌孢子漂浮于培养瓶的整个空间,包括果蝇身上,如将此果蝇接种到新的培养基中,大约经过4 ~5d,培养基将会重新长出霉菌来,遇到该问题,解决的方法只有两种:一是不再接种这种长霉菌果蝇,重新接种未长霉的果蝇;二是采取措施去除果蝇身上的霉菌孢子。去除霉菌方法为:将带有霉菌孢子的成蝇倒入空培养瓶中,棉塞上倒适量的75%酒精,再将瓶口塞紧,利用酒精具有挥发性,挥发后的酒精充满整个瓶内,从而将果蝇身上的霉孢子去除。在操作上应注意两点:一是倒在棉塞上的酒精量要合适,过多果蝇易昏厥,过少去除不了霉菌孢子;二是果蝇呆在空瓶内的时间要恰当,以2d为好。

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细菌内毒素检测是一项关键的QC放行检测,这意味着生物制品只有通过该项测试才能向公众放行使用。过去30年来,内毒素检测一直使用从鲎中提取的鲎试剂,检测药品和疫苗。在这段时间里,内毒素检测和技术几乎没有变化,直到最近才有了极小的改进。业界已经看到了传统内毒素检测的弊端,并表达了很多理由,为什么改进内毒素检测会非常有用。业内通过采用创新技术来寻求改进内毒素检测,这些创新不仅可以减少检测时间,还可以提高数据可靠性,以便更有效、更安全地将产品提供给患者。


使用传统的凝胶法和96孔板方法有一些注意事项。这些陈旧的技术都是手动的,需要分析员在QC实验室里花大量时间操作。需要的人工干预越多,内毒素检测就越容易出现错误。凝胶法是一种定性测试,也就是一种合格或不合格的测试。96孔板动力学方法是凝胶法的升级版,因为这些测试是定量的、半自动化的。但这些方法仍需要大量时间来设置和执行,并容易出现一系列的错误。


内毒素检测

是一项非常敏感的测试,可检测到低至万亿分之一的内毒素(相当于奥林匹克标准泳池中的一粒沙子)。这种检测手段灵敏度非常高,但也意味着用户造成的任何类型的小污染都很可能会被检测到。药企希望更快地将他们的产品推向市场以帮助患者,因此如果由于污染导致内毒素检测失败或无效,这将需要重新检测、调查原因,并最 终延迟向有需要的患者放行此产品的时间。



细菌内毒素检测是一项关键的QC放行检测,这意味着生物制品只有通过该项测试才能向公众放行使用。过去30年来,内毒素检测一直使用从鲎中提取的鲎试剂,检测药品和疫苗。在这段时间里,内毒素检测和技术几乎没有变化,直到最近才有了极小的改进。业界已经看到了传统内毒素检测的弊端,并表达了很多理由,为什么改进内毒素检测会非常有用。业内通过采用创新技术来寻求改进内毒素检测,这些创新不仅可以减少检测时间,还可以提高数据可靠性,以便更有效、更安全地将产品提供给患者。


使用传统的凝胶法和96孔板方法有一些注意事项。这些陈旧的技术都是手动的,需要分析员在QC实验室里花大量时间操作。需要的人工干预越多,内毒素检测就越容易出现错误。凝胶法是一种定性测试,也就是一种合格或不合格的测试。96孔板动力学方法是凝胶法的升级版,因为这些测试是定量的、半自动化的。但这些方法仍需要大量时间来设置和执行,并容易出现一系列的错误。


内毒素检测

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如何改进您的qPCR数据

关于实时荧光定量PCR技术,最常见的应用是通过RT-qPCR进行基因表达分析、疾病诊断和管理(如病毒定量)、食品检测(如转基因或过敏原分析)以及动物或植物育种等研究。这种方法非常灵敏,因此为了得到可靠的实验数据,避免错误是十分重要的。RT和qPCR数据评估的整个工作流程包括以下几点:

1、实验设计

2、样品的制备和提取/纯化

3、RT和qPCR

4、数据评估

在以上过程中,实验人员有可能因为操作错误或失误导致实验数据的失真。但往往有些错误的来源又十分不明确,所以排除故障的第一步是需要再次检查实验流程并重复实验。

实验设计

RT或qPCR反应的第一个重要步骤是测定PCR产物及验证相应的引物和探针。实时RT-qPCR引物和探针最有效的设计是使用引物设计软件,大多数软件都可以调整设置参数的最佳属性,以检索到符合要求的引物探针序列。这些设置参数考虑熔化温度Tm、互补性、二级结构以及扩增子大小和其他重要因素。同时建议跨内含子设计引物,避免来自gDNA的干扰,直接得到cDNA片段。对于基因特异性引物的设计,应满足以下标准:

扩增子大小: 75-200 bp

引物长度: 18-30 bp

GC 含量: 40-60%

解链温度: 55-60℃

3' 端: 1-2 G or C,以具有良好的稳定性

不超过3个G or C (可能不匹配)

没有二级结构,重复序列或回文结构

浓度: 150-200 nM

样品的制备和提取/纯化

模板的质量直接影响到检测性能,在qPCR结果的故障排除过程中也需要考虑。首先,组织取样和保存是实验可变性的第一个潜在来源。对于基因的定量,必须使用高质量的RNA,这意味着需要非常仔细地检查RNA的浓度和质量。

降解或不纯的RNA会限制逆转录反应的效率,降低产量;部分降解的RNA可能不能给出准确的基因表达结果。核酸应从新鲜或立即冷冻的组织中提取和纯化;同时建议使用生物学重复(至少3个)。RNA或DNA的分离是PCR实验前的关键步骤。这是必要的,以便提取对所有样本都是有效的,并得到纯化的核酸(DNA,RNA)。可采用高分辨率琼脂糖凝胶检测核酸质量和分光光度法(A260/A280=1.8和A260/A230=2.0)检测核酸纯度。

另外也要注意,用于PCR制备的工作空间所有台面及物品都应进行常规去污,以防止交叉污染。

逆转录和实时荧光定量PCR

RT-qPCR是一种分析DNA或RNA的高灵敏性工具。当PCR扩增靶标时,错误同时被放大。可以通过标准化和尽量减少移液步骤来减少PCR反应中的技术错误;在无灰尘的干净环境中建立反应;通过对无模板(水)对照进行PCR反应,常规检查引物和试剂库存的DNA污染等。

在进行qPCR时可能会出现以下故障:没有扩增、qPCR效率多大或过小、Cq值过大、重复性差、扩增曲线异常、非特异性扩增等等。

运行后的数据分析-基线和阈值的设置

基线校正是去除背景荧光的必要条件。可能的原因是qPCR设备的检测器噪音,或是不同的样品量或染料(探针或插入染料)的残留荧光。所有样本的基线起点一般从0~3个循环开始进行量化,基线终点是在各个扩增曲线起峰位置前的1~2个循环。为了使实时RT-qPCR数据有意义,应在扩增曲线的指数扩增阶段设置阈值,阈值自动设置一般是基线期荧光信号标准偏差的10倍。

Cielo™实时荧光定量PCR系统

Cielo™实时荧光定量PCR系统可为您提供3/6检测通道,根据实验需求灵活配置。这款产品采用高能LED作为光源系统,可保证光源强度高,光源一致性好;高品质的帕尔贴温度模块作为温控系统,升降温速率快,可设置12列跨度30°C的温度梯度;CMOS拍照+光纤信号传输作为检测系统,CMOS检测灵敏度高,光纤传输速度快,无光损失和噪音干扰,无需ROX校准。Cielo™实时荧光定量PCR系统可为您的科学研究提供高精准度、高灵敏度和高可靠性的实验结果。


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