简述血球计数板的结构和计数原理?

爱你雅微 2017-04-17 12:57:05 1878 浏览

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进pls自我 2017-04-18 00:00:00

　血球计数板（改良牛鲍计数板）　　用优质厚玻璃制成。每块计数板由H形凹槽分为2个同样的计数池。计数池两侧各有一支持柱，　　将特制的专用盖玻片覆盖其上，形成高0.10mm的计数池。计数池画有长、宽各3.0mm的方格，分　　为9个大方格，每个大格面积为1.0mm.容积为0.1mm（ul），其中，ZY大方格用双线双成25个中　　方格，位于正中及四角5个中方格是红细胞计数区域，用单线划分为16个小方格。四角的4个大方格　　是白细胞计数区域，用单线划分为16个中方格。根椐国际标准局（NBS）规定，大方格每边长度允　　许误差为±1%。 [编辑本段]红细胞计数公式　　红细胞数/L=N*25/5*10*10^6*200 　　N为：五个中方格的RBC总数　　N*25/5为：ZY大方格RBC总数（即：0.1mm（ul）的RBC总数）　　N*25/5*10为：1mm（ul）RBC总数　　N*25/5*10*10^6为：1L的RBC总数　　*200为血液的稀释倍数　　公式简化后：红细胞数/L=N/100*10^12 [编辑本段]测微尺的构造和使用方法　　测微尺分目镜测微尺和物镜测微尺.目镜测微尺用来测量视野中的物体长度;物镜测微尺是标准长度，用来标定目镜测微尺. 　　(1)目镜测微尺的构造目镜测微尺是一块圆形玻片，其ZY刻有精确的刻度，通常是将5mm划分为50格，实际每格等于100μm.刻度的大小随着使用的目镜和物镜的放大倍数而改变，用前必须用物镜测微尺来标定. 　　(2)物镜测微尺的构造物镜测微尺为一块特制的载玻片，其ZY有一小圆圈.圆圈内刻有分度，将长1mm的直线等分为100小格，每小格等于10μm. [编辑本段]目镜测微尺的标定　　(1)取下目镜，旋下目镜上的透镜，将目镜测微尺放人目镜的中隔板上，使有刻度的一面朝下，再旋上透镜，并装入镜筒内. 　　(2)将物镜测微尺置于显微镜的载物台上，使有刻度的一面朝上，同观察标本一样，使具有刻度的小圆圈位于视野ZY. 　　(3)先用低倍镜观察，对准焦距，待看清物镜测微尺的刻度后，转动目镜，使目镜测微尺的刻度与物镜测微尺的刻度相平行，并使两尺的左边diyi条线相重合，再向右寻找两尺的另外一条重合线.(4)记录二条重合线间的目镜测微尺的格数和物镜测微尺的格数. [编辑本段]计算方式　　(1)目镜测微尺每格长度=两个重叠刻度间物镜测微尺格数×10/两个重叠刻度间目镜测微尺格数　　(2)以同样方法，分别在不同倍率的物镜下测定测微尺上每格的实际长度. 　　(3)如此测定后的目镜测微尺的尺度，仅适用于测定时所用的显微镜的目镜和物镜的放大倍数.若更换物镜，目镜的放大倍数时，必须再进行校正标定. [编辑本段]血球计数板的构造和使用　　血球计数板是由一块比普通载玻片厚的特制玻片制成的.玻片中有四条下凹的槽，构成三个平台.中间的平台较宽，其中间又被一短横槽隔为两半，每半边上面，刻有一个方格网.方格网上刻有9个大方格，其中只有中间的一个大方格为计数室，供微生物计数用.这一大方格的长和宽各为1mm，深度为0.1mm，其体积为0.1mm3. 　　计数室通常有两种规格.一种是大方格内分为16中格，每一中格又分为25小格;另一种是大方格内分为25中格，每一中格又分为16小格.但是不管计数室是哪一种构造;它们都有一个共同的特点，即每一大方格都是由16×25=25×16=400个小方格组成，见图. [编辑本段]血球计数板的使用　　以计数酵母菌为例　　(1)用血球计数板计数酵母菌悬液的酵母菌个数. 　　(2)样品稀释的目的是便于酵母菌悬液的计数，以每小方格内含有4-5个酵母细胞为宜，一般稀释10倍即可. 　　(3)将血球计数板用擦镜纸擦净，在ZY的计数室上加盖专用的厚玻片. 　　(4)将稀释后的酵母菌悬液，用吸管吸取一滴置于盖玻片的边缘，使菌液缓缓渗入，多余的菌液用吸水纸吸取，捎待片刻，使酵母菌全部沉降到血球计数室内. 　　(5)计数时，如果使用16格×25格规格的计数室，要按对角线位，取左上，右上，左下，右下4个中格(即100个小格)的酵母菌数.如果规格为25格×16格的计数板，除了取其4个对角方位外，还需再数ZY的一个中格(即80个小方格)的酵母菌数. 　　(6)当遇到位于大格线上的酵母菌，一般只计数大方格的上方和右方线上的酵母细胞(或只计数下方和左方线上的酵母细胞). 　　(7)对每个样品计数三次，取其平均值，按下列公式计算每1ml菌液中所含的酵母菌个数. 　　3.计算公式　　(1)16格×25格的血球计数板计算公式: 　　酵母细胞数/ml=100小格内酵母细胞个数/100×400×10四次方×稀释倍数　　(2)25格x16格的血球计数板计算公式: 　　酵母细胞数/ml=80小格内酵母细胞个数/80×400×10四次方×稀释倍数　　4.血球计数板的清洁　　血球汁数板使用后，用自来水冲洗，切勿用硬物洗刷，洗后自行晾干或用吹风机吹干，或用95%的乙醇，无水乙醇，丙酮等有机溶剂脱水使其干燥.通过镜检观察每小格内是否残留菌体或其他沉淀物.若不干净，则必须重复清洗直到干净为止.

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简述血球计数板的结构和计数原理?:

血球计数板的使用方法:

血球计数板血细胞计数板有区别吗?:

急！！关于血球计数板和细菌计数的问题: 1.血球计数板和细菌计数板的差别是什么分别是什么样子的？细菌计数板的百科上特别具体地介绍了血球计数板的样子但是细菌计数板连张图都没有但是又说“细菌计数板较薄，可以使用油镜观... 1. 血球计数板和细菌计数板的差别是什么分别是什么样子的？细菌计数板的百科上特别具体地介绍了血球计数板的样子但是细菌计数板连张图都没有但是又说 “细菌计数板较薄，可以使用油镜观察。而血球计数板较厚，不能使用油镜” 但是我用的是油镜又觉得使用血球计数板的就是像图上那个 2.http://wenku.baidu.com/view/b24d80040740be1e650e9a56.html这个文库的资料里说 “或细胞数<200个/10mm2或>500个/10 mm2 时，说明稀释不当，需重新制备细胞悬液。”是什么意思？我用的是数五大格总数来计数的想知道根据上面这段话 5格加、起、来（就是5格总数）需要大于、小于多少个菌数？ 3. 可以的话介绍一下细胞计数的方法都有哪些只列名字也没关系尽量多点我知道问题有点繁琐大家帮帮忙谢谢！展开

谁能给我解释下细胞计数原理和方法，特别是血球计数板:

关于高中生物血球板计数板误差分析。: 某同学统计小鼠红细胞密度：用吸取混匀的红细胞悬浮液，向计数室中滴2滴悬浮液加盖玻片静置后在显微镜下观察、计数。操作统计的数据是（）填偏大，偏小，不变。... 某同学统计小鼠红细胞密度：用吸取混匀的红细胞悬浮液，向计数室中滴2滴悬浮液加盖玻片静置后在显微镜下观察、计数。操作统计的数据是（）填偏大，偏小，不变。展开

血球计数板和平板菌落计数的主要差异在哪里？:

血球计数板盖玻片有哪些规格？:

血球计数板计数法为什么先盖盖玻片:

血球计数板为什么只计活细胞:

为什么血球计数板的计算公式是这样的？: 16格×25格的血球计数板计算公式: 酵母细胞数/ml=100小格内酵母细胞个数/100×400×10四次方×稀释倍数 25格×16格的血球计数板计算公式: 酵母细胞数/ml=80小格内酵母细胞个数/80×400×10四次方×稀释倍数

血球计数板的误差来源及避免方法:

血球细胞计数板配套专用盖玻片哪里有？:

拥有这台仪器，告别被血球计数板支配的恐惧

你知道吗？

从18世纪血球计数板首次被应用于分析病人血液样本以来，逐渐发展为实验室细胞计数的标准工具。

但是由于其本身固有设计的简易性和使用过程的复杂性，导致其计数结果会有一个必然的误差。其误差主要来源于人为操作因素：

细胞悬液的混匀

均匀细胞悬液的准备对计数结果的准确性至关重要。对于某些极易聚团或未能均匀打散的细胞悬液，人工计数时，往往不易识别。

细胞悬液的稀释

依据大多数实验室的习惯，通常会采取对四个顶角的大格内的细胞进行统计计数，每个大格的细胞一般落在30-50个之间时，计数结果会更加准确。这就意味着，细胞悬液过浓或者是过稀都不利于获得准确的结果。多数情况下，我们需要对悬液进行有效的稀释。

盖玻片的摆放

据一项研究表明，在计数过程中，盖玻片的位置不准确可造成7.6%的计数差异。

人工计数过程的误差

一项实验表明，不同操作者之间的计数差异能高达52%，而同一个操作者的计数差异为20%。在计数过程中，往往需要同一个人在相同的条件下进行多次计数以消除误差。（即使这样，也可能会产生20%的误差）

人为计算过程的误差

通过计数板获取的数据结果，需要通过一系列的计算，从而转化成实际的细胞浓度数据。再乘以细胞原液的稀释倍数（如台盼蓝的稀释等），方能得到所需样品的细胞浓度。计算过程中的误差也会影响到Z终的实验结果。

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用血细胞计数板计数的方法叫什么:

为什么说用/血球计数板对细胞计数时的样品浓度一般要求在每毫升:

血细胞计数板计数的误差主要来自哪些方面:

生物血细胞计数板: 在计数的步骤中，为什么是先盖盖玻片，再向边缘滴加悬浮液，让其慢慢流进计数室？如果直接向计数室滴加悬浮液，再盖盖玻片，会有什么误差？望高人指点，不胜感激... 在计数的步骤中，为什么是先盖盖玻片，再向边缘滴加悬浮液，让其慢慢流进计数室？如果直接向计数室滴加悬浮液，再盖盖玻片，会有什么误差？望高人指点，不胜感激展开

浮游生物计数板怎么计数

浮游生物计数板怎么计数

浮游生物是水体生态系统中的重要组成部分，其数量和种类的变化直接反映了水质的好坏。浮游生物计数是环境监测、生态研究、渔业资源评估等领域中的基础工作。而浮游生物计数板作为计数浮游生物的重要工具，其使用方法和计数技巧对于确保数据准确性至关重要。本文将详细介绍浮游生物计数板的计数方法，帮助相关研究人员和技术人员掌握其正确使用技巧，进而提高浮游生物计数的效率与精度。

浮游生物计数板的基本原理

浮游生物计数板通常由透明的平面玻璃板组成，表面有均匀的网格状刻线，每个网格单元用于容纳一定数量的浮游生物样本。其基本原理是通过将水样滴入计数板的格网内，然后在显微镜下观察每个网格内的浮游生物，从而对浮游生物的密度和种类进行计数。

计数方法

水样的准备在使用浮游生物计数板之前，首先需要准备适量的水样。水样的取样方法通常要求在水体的不同位置和深度进行采集，以确保样本的代表性。水样应该经过均匀搅拌，防止浮游生物的沉积或分层。
水样的分配将准备好的水样小心地滴入计数板的网格区域。根据计数板的规格，通常可以滴入适量的水样，以便填充整个网格。需要注意的是，水样的量应适中，过多或过少都会影响计数的准确性。
显微镜观察将计数板置于显微镜下，调整焦距，确保能够清晰观察到每个网格内的浮游生物。在观察过程中，使用专业的计数方法，按照网格进行分区计数，确保每个网格内的浮游生物都被准确记录。
计数技巧计数时应注意不要重复计数同一只浮游生物。通常采用“回溯计数法”，即从显微镜下看到的浮游生物按一定顺序记录，并在完成一个网格的计数后，迅速进行下一个网格的观察，以防混淆。根据浮游生物的大小和形态，可能需要通过调整显微镜的放大倍数来提高计数的精确度。
数据计算与分析在完成计数后，根据计数板的格网面积和观察的总水样量，计算出浮游生物的密度，进而进行相关的生态分析。不同种类的浮游生物在生态环境中的意义不同，因此需要结合浮游生物的种类进行详细分类分析。