用于微流体平台中3D神经元网络的形态学表征的高通量测定法

本文由 美谷分子仪器（上海）有限公司 整理汇编

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  建立生理相关的体外模型对于进一步了解神经疾病的机制以及靶向药物开发至关重要。 iPSC 衍生的神经元显示出对化合物筛选和疾病建模的巨大希望，然而目前已经出现了使用三维 (3D) 培养物作为对神经元细胞的测定开发的有效方法。3D 培养被认为是更接近人类组织的重演方式，包括结构，细胞组织，以及细胞 - 细胞和细胞 - 基质相互作用1,2。 本研究的重点是利用微流控 OrganoPlate®平台培育的 iPSC 衍生神经元开发高通量 3D神经突向外生长测定方案，目标是建立神经退行性疾病和神经毒理学筛查的 3D 模型 3。OrganoPlate® 是一个高通量平台，结合了新近的 3D 细胞培养技术，Phaseguides™ 和微流体技术 4,5,6。OrganoPlate 包含 96 个适合长期培养活细胞的组织芯片，适用于筛选目的，并且与标准实验室设备或自动化系统兼容，如 ImageXpress® Micro Confocal高内涵成像系统。[详细]

  2024-09-28 00:12

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  3D 培养被认为是更接近人类组织的重演方式，包括结构，细胞组织，以及细胞 - 细胞和细胞 - 基质相互作用1,2。[详细]

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  2014-10-27 00:00

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  3D 成像表征生物打印的卵巢癌模型[详细]

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  功能和优势强大的3D飞行时间测量技术（TOF）这些3D传感器的原理基于IFM获ZL且屡获奖项的PMD技术。它专为室外应用以及拥有复杂环境光的场合而设计。在移动机械上存在的阳光或具有不同的反射特性的材料等干扰不会对测量暑假的重复精度造成影响。强大的电子装置集成的2X32位处理器架构可确保快递，可靠的距离计算，并且输出帧率Z高可达50FPS。移动3D传感器的所有电子器件都经过优化，能满足移动机械的要求。除了抗冲击和振动外，还可提供从传感器到IR系统照明单元的自诊断功能。系统正常运行时间长系统拥有多种功能，可确保运行不中断。它们包括脏污指示，不同的状态信息（可通过CAN获得）等。系统参数设置和检测系统参数设置和3D数据实时检测通过转为WINDOWS设计的易用的IFM视觉向导完成通信接口移动3D传感器配有快速以太网（100MBIT）接口和CAN接口。完整3D信息的数据输出通过EtherentUDP进行，并且可在客户场所使用处理单元处理。对于该版本，CAN接口仅可用于参数设置和状态输出。[详细]

  2018-11-22 10:00

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  一、普通光学显微镜观察方法1)苏木素－伊红染色(HE染色法)石蜡组织切片的HE染色1．取材组织块，经固定后，常规石蜡包埋，4μm切片。2．切片常规用二甲苯脱蜡，经各级乙醇至水洗：二甲苯(I)5min→二甲苯(Ⅱ)5min→100％乙醇2min→95％的乙醇1min→80％乙醇1min→75％乙醇1min→蒸馏水洗2min。3．苏木素染色5min，自来水冲洗。4．盐酸乙醇分化30s(提插数下)。5．自来水浸泡15min或温水(约50℃)5min。6．置伊红液2min。7．常规脱水，透明，封片：95％乙醇(I)min→95％乙醇(Ⅱ)1min→100％乙醇(I)1min→100％乙醇(Ⅱ)1min→二甲苯石碳酸(3：1)1min→二甲苯(I)1min→二甲苯(Ⅱ)1min→中性树脂封固。2)甲基绿－派诺宁染色法1．新鲜取材组织固定液中4℃固定3～6小时。2．直接转入95％乙醇脱水和无水乙醇脱水，二甲苯透明，石蜡包埋。3．切片经二甲苯脱蜡，梯度乙醇水化至蒸馏水。4．置染色液中室温下染片约1h。5．取出切片，不经水洗，用滤纸吸干多余染液。6．插入丙酮中迅速分化。7．转入丙酮二甲苯(1：1)稍洗。8．二甲苯透明2～3次。9．中性树胶封固。3)Giemsa染色1．收集细胞(1×106)，PBS洗1次。2．用细胞涂片离心机制成细胞涂片。3．甲醇固定3～5min。4．入Giemsa稀释染色液15～30min，冬天在37℃温箱中染色。5．用磷酸盐缓冲液分色，以镜下控制为准。6．涂片晾干后用中性树胶封片。4)瑞氏(Wright)染色1．收集细胞(1×106)，PBS洗1次。2．用细胞涂片离心机制成细胞涂片。3．甲醇固定3～5min。4．用Wright液染色2min。5．入Wright磷酸缓冲液稀释液4～10min，然后用蒸馏水冲洗。此时如果颜色较深，可0.08％醋酸分化数秒钟6．直立晾干后，用中性树胶封固。二、透射电子显微镜观察方法1)透射电镜样本的取材和固定培养细胞的取材和固定1．常规收集帖壁和悬浮细胞，置离心管中离心，800～1000r/min，10min。2．用0.01mol/LPBS5ml重悬细胞。3．将细胞悬液吸入有琼脂空槽的离心管中。4．离心，2000r/min，15～20min，使细胞成团。5．小心吸去上清，加入2.5％戊二醛固定液固定细胞团，以免细胞团散开。6．取出离心管内的琼脂，仔细切下尖槽内含有细胞团的琼脂块。7．将含细胞的团琼脂块投入含戊二醛固定液的小瓶中，4℃(可长期)保存。8．用0.1mol/LPBS缓冲液洗1次。9．1％锇酸后固定30～60min。三、荧光显微镜观察方法1)吖啶橙染色法1．制备活细胞悬液，浓度约为107/ml。2．取95μl的细胞悬液，加5μl的吖啶橙贮存液混匀。3．吸一滴混合液点洁净玻片上，直接用盖玻片封片。4．荧光显微镜选用激发滤片BG12或BV等，阻断滤片用515nm或SP3。2)Hoechst33258染色法1．原代细胞培养，细胞学涂片或细胞甩片机制备的单细胞片。2．细胞固定液4℃固定5min。3．蒸馏水稍洗后，点加Hoechst33258染色液，10min。4．蒸馏水洗片后，用滤纸沾去多余液体。5．封片剂封片后荧光显微镜观察。3)Hoechst33342染色法1．将Hoechst33342加入培养的细胞中，终浓度为10μg/ml37℃孵育30min。2．4％的多聚甲醛和培养液以1：3混合，使多聚甲醛的浓度为1％，固定细胞5～10min。3．固定好后，将细胞悬液涂在载玻片加盖玻片。4．荧光显微镜激发滤片选用UV激发滤片，阻断滤片为400～500nm。以上是先将细胞染色后再行固定观察的方法，也可先固定后染色：1．收集(0.5～3.0)×106个细胞，500～1000r/min，离心5min去上清。2．PBS洗1次，500～1000r/min，离心5min去PBS。3．用3％多聚甲醛50μl重悬细胞，室温下固定10min。4．PBS洗1次，500～1000r/min离心5min去PBS。5．用15μl的Hoechst33258或33342重悬细胞，终浓度为16μg/ml，孵育15min。6．取10μl放在玻片上，荧光显微镜下观察，可数500个细胞，计算调亡率。[详细]

  2018-09-28 10:00

  产品样册

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• 微流体粘度计在有机产品中的应用

  微流体粘度计在有机产品中的应用[详细]

  2024-09-19 23:59

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• 微流体芯片实验产品目录

  微流体芯片实验产品目录[详细]

  2011-04-08 00:00

  报价单

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• 器官芯片模型中血管生成的3D图像分析与表征

  血管生成是由预先存在的血管所形成和重塑的新血管及毛细血管的生理过程。这可以通过血管和毛细血管的内皮细胞出芽或分裂来实现。[详细]

  2021-02-20 09:57

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• 器官芯片模型中血管生成的3D 图像分析与表征

  细胞经历过这些过程后，形成一个包含腔的管，一个动态的空间，促进血液流动和氧、二氧化碳、一氧化氮和营养物质的交换。血管生成是生长发育、伤口愈合和肉芽组织形成的重要过程。血管生成生长也会支持肿瘤细胞在健康组织中的侵袭，在癌症研究中通常被量化监测。当血管芽向血管生成刺激源延伸时，内皮细胞利用黏附分子进行纵向迁移。这些芽随后形成环状，利用迁移至此的细胞形成一个完整的血管腔。出芽过程在体内以每天几毫米的速度进行着，并使新的血管能够跨越间隙生长。[详细]

  2022-10-08 11:13

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