| 产品名称 | 外周血单个核细胞(PBMC)分离试剂盒(密度梯度离心) |
| 货号 | SNE-001 |
| 规格 | 125mL/500mL |
| 产品简介 | 本产品是一种无菌、无内毒素、无热源的等渗溶液,其主要成分是聚蔗糖(Ficoll)和泛影酸钠(Sodium Diatrizoate),密度为1.077±0.001 g/mL。该密度恰好介于外周血中单个核细胞(Peripheral Blood Mononuclear Cells, PBMC,主要包括淋巴细胞和单核细胞)与粒细胞、红细胞之间。通过密度梯度离心,可以快速、有效地从外周血(已验证人/大鼠/小鼠)中分离出高纯度、高活性的PBMC。 |
| 使用方法 | 一、实验准备材料: 1.器材: 无菌肝素钠或EDTA抗凝采血管 无菌离心管(15 mL或50 mL锥底离心管) 移液器及无菌吸头 水平转子离心机 生物安全柜/超净工作台 PBS缓冲液(含1-2%胎牛血清FBS可减少细胞粘附) 细胞完全培养液(如尚恩生物SNPM-H287人外周血单个核细胞完全培养基/SNPM-M102小鼠外周血单个核细胞完全培养基/SNPM-R102大鼠外周血单个核细胞完全培养基) 2.样本: 外周血,使用肝素钠或EDTA进行抗凝处理。 建议使用新鲜血液,或采集后4小时内尽快进行分离。 二、操作步骤: 核心原则:始终保持分离液与血液样本的分层界面清晰。 1.稀释血液: 将采集的抗凝全血与等体积的样品稀释液轻轻混匀,进行稀释。(注:稀释可降低血液密度和粘度,提高分离效率) 2.铺层: 1)取一个无菌离心管,先加入适量的外周血细胞分离液(例如,对于2 mL稀释血加入3 mL分离液;4毫升稀释血加5 mL分离液)。 2)用移液器吸取稀释后的血液,将吸头尖端伸至分离液液面上方,沿着管壁缓慢、匀速地加在分离液液面上。最终形成清晰的上层(稀释血)、下层(分离液)结构。(注:动作务必轻柔,避免冲击界面,使两层液体混合。) 3.密度梯度离心: 1)将离心管对称放入水平转子中,配平。 2)设置离心条件:室温,450 g(或约1500-2000 rpm),升速降至最低,降速设为0,离心30分钟。(注意:离心机品牌和转子型号不同,g力会有差异。若无“升速/降速”设置,请手动选择最慢的加速和刹车档位。不同体积的血液样本离心时间和转速会有差异,体积越大离心转速和时间会更多,需要自行摸索最佳离心方案以达到最佳分离效果) 4.收集PBMC: 1)离心后,小心取出离心管,管内液体分为四层(如图所示): 2)用移液器小心地吸掉最上层的血浆层,直至接近白膜层。 3)用新的1毫升无菌枪头,轻轻沿离心管壁旋转,将白膜层细胞全部吸取至一个新的无菌离心管中。(注意:尽量少吸取分离液,以免污染。) ![]() 5.洗涤细胞: 1)向含有PBMC的离心管中加入5-8倍体积的PBS缓冲液(或含血清的培养液),轻轻吹打混匀。 2)进行离心,离心条件:室温,450 g(约1500 rpm),离心10分钟。 3)离心后,弃去上清液,可见管底白色细胞沉淀。 4)重复洗涤1次,以确保去除残留的分离液。 5)再次加入PBS缓冲液(或含血清的培养液)清洗,200g,离心5分钟,尽量去除残留血小板。 6.细胞计数与培养: 1)用适量的完全培养液或后续实验所需的缓冲液重悬细胞。 2)取少量细胞悬液,使用台盼蓝染色法进行细胞计数和活力测定。 三、预期结果: 细胞得率:通常,一只健康成年小鼠可采集到0.8-1.2 mL全血,分离后可获得约1-5×10^6个PBMC(得率因小鼠品系、年龄和健康状况而异)。 细胞活力:使用本方法分离的PBMC,其活力通常高于95%。 细胞纯度:PBMC中淋巴细胞占比最高(约80-90%),单核细胞次之(约10-20%)。 |
| 产品组分 | ![]() |
| 存储条件 | 18-25°C 室温条件下避光储存。请勿冷冻,冷冻会破坏其结构导致失效。 |
| 保质期 | 两年 |
| 常见问题 | ![]() |
注意事项:
1.无菌操作: 整个分离过程应在无菌环境下进行,以防细胞污染。
2.温度: 所有试剂和离心均应在室温(18-25°C) 下进行,低温会影响分离液密度和细胞回收率。
3.轻柔操作: 在铺层、吸取细胞层和洗涤过程中,动作务必轻柔,避免物理剪切力对细胞造成损伤。
4.血液新鲜度: 使用新鲜血液是获得高活力细胞的关键。陈旧血液会导致细胞死亡和分层不清。
5.离心机设置: 正确的离心速度和时间至关重要。过高的速度会导致粒细胞污染,过低则回收不全。关闭刹车(或设为最低) 是保持分层界面清晰的关键。
6.红细胞去除: 如果得到的PBMC中红细胞残留较多,可使用红细胞裂解液(例如尚恩生物SNR-007 红细胞裂解液(10x,不含固定剂))进行处理。
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