单细胞等离激元免疫夹心法 - 产品信息 - 相关知识

2025-01-10 17:02:33单细胞等离激元免疫夹心法: “单细胞等离激元免疫夹心法”是一种前沿的生物检测技术，它结合了等离激元效应与免疫夹心法的原理，实现了对单细胞水平上的生物分子高灵敏、高特异性的检测。该技术通过等离激元纳米结构增强光学信号，使得目标分子在单细胞层面上的微小变化得以放大并准确识别。免疫夹心法则确保了目标分子的特异性捕获与检测，提高了实验的准确性和可靠性。该方法在生物医学研究、疾病诊断与治疗监测等领域具有广阔的应用前景。

单细胞等离激元免疫夹心法相关内容

全部
资讯
产品
问答

单细胞等离激元免疫夹心法资讯

Nat. Protoc. 南京大学刘震教授团队实现单个活细胞内低拷贝数蛋白质的分析 | 前沿用户报道

HORIBA XploRA INV多功能拉曼成像光谱仪集成研究级倒置显微镜，专为生命科学研究而设计。

HORIBA 科学仪器事业部 517
2022-07-16
单细胞等离激元免疫夹心法免疫识别等离激元拉曼检测技术

单细胞等离激元免疫夹心法产品

产品名称

所在地

价格

供应商

咨询

: HSY-8926A 润滑油不溶物测定仪（离心法）; 国内上海; 面议; 上海颀高仪器有限公司
售全国; 我要询价联系方式

: 离心法脱盐柱 5支; 面议; 深圳逗点生物技术有限公司
售全国; 我要询价联系方式

: 原油水分和沉淀物测定仪（离心法）; 国内山东; ￥200000; 山东盛泰仪器有限公司
售全国; 我要询价联系方式

: HSY-6533原油中水和沉淀物测定仪（离心法）; 国内上海; 面议; 上海颀高仪器有限公司
售全国; 我要询价联系方式

: Digtor 21 C离心法测量油中水; 国外欧洲; 面议; 优莱博技术（北京）有限公司
售全国; 我要询价联系方式

单细胞等离激元免疫夹心法问答

2021-03-03 11:49:05大咖云集·学术荟萃丨电子、光子和等离激元2021国际在线研讨会: 线上会议时间：2021年3月10日—12日会议摘要扫描近场光学显微镜（SNOM）和电子-能量损失光谱（EELS）是用于研究固体物质与分子各种时空特征激发的强大技术，等离基元是其中一个非常重要的研究方向。尽管这两种技术分别使用电子和光子作为探针粒子来获取类似的信息，但这两项技术在作用机理的本质上可能是截然不同的。在本次国际研讨会中，我们将邀请来自国际多所著名高校的学者，分享Nature、Science等期刊ZX科研进展，就SNOM和EELS两项探测方法进行学术交流，并讨论其可能的共同点与交叉领域。注册报名您可通过扫描下方二维码或点击此处报名注册参与《电子、光子和等离激元2021国际在线研讨会》。会议特邀报告Dimitri Basov (Columbia University, USA) March 11 at 15:00Live from New York: Polaritons in van der Waals Materials Rainer Hillenbrand (nanoGUNE Donostia-San Sebastian, Spain) March 11 at 15:40Nanophotonics with phonon polaritons in 2D materials Fritz Keilmann (LMU Munich, Germany) March 10 at 16:40Infrared near-field nanospectroscopy of living cells Frank Koppens (ICFO Barcelona, Spain) March 10 at 16:15Infrared and THz near-field imaging of twisted 2D materials and polaritonic nanocavities Alex McLeod (Columbia University, USA) March 12 at 16:15Revealing nano-plasmonics in 2D materials and correlated oxides at variable temperatures Thomas Taubner (RWTH Aachen, Germany) March 11 at 17:40Phonon-enhanced infrared near-field spectroscopy enables probing of the buried 2DEG at the LAO/STO interface Yixi Zhou (University of Geneva, Switzerland) March 11 at 18:05Cryo-SNOM studies of polaritons at oxide interfaces 会议程序EPP-2021 Program (March 10-12, 2021), updated 25.02.2021March 10 (Wednesday)ChairmanTime (CET)Speaker Title14:50OpeningBrett Barwick15:00Giovanni VanacoreTutorial and overview: Whe n electr ons meet light: a new route for dyn amic visualizati on of plasm ons and cohere nt con trol of matter waves15:40Mathieu KociakNanooptics with fast electron beams16:05BreakJoshua Caldwell16:15Frank KoppensInfrared and THz near-field imaging of twisted 2D materials and polaritonic nanocavities16:40Fritz KeilmannInfrared near-field nanospectroscopy of living cells17:05Misha FoglerScanning Photocurrent Nanoscopy of Van der Waals Heterostructures17:30BreakAlexandre Zimmers17:40Dirk van der MarelPlasmons in strongly correlated matter18:05Peter AbbamonteCoherent and incoherent collective excitations at the Fermi liquid--strange metal crossover in Sr2RuO418:30Discussions19:15PostersMarch 11 (Thursday)ChairmanTimeSpeakerTitleErik van Heumen15:00Dimitri BasovTutorial and overview: Live from New York: Polarit ons in van der Waals Materials15:40Rainer HillenbrandNanophotonics with phonon polaritons in 2D materials16:05BreakAlbert Polman16:15Matteo MitranoDynamical control of effective interactions in quantum materials16:40Regina CiancioUnveiling the role of oxygen vacancies in structural and functional properties of complex oxides thin films by atomic site HAADF-STEM and EELS17:05Francesco MauriMeasuring phonon dispersion suspended 2D nanostructures in the electron microscope17:30BreakChristian Bernhard17:40Thomas TaubnerPhonon-enhanced infrared near-field spectroscopy enables probing of the buried 2DEG at the LAO/STO interface18:05Yixi ZhouCryo-SNOM studies of polaritons at oxide interfaces18:30Discussions19:15PostersMarch 12 (Friday)ChairmanTimeSpeakerTitleMichele Ortolani15:00Javier Garcia de AbajoTutorial and overview: Optical Excitations with Free Electrons: Challenges and Opportunities15:40Claus RopersProbing and tailoring electron-light interactions in ultrafast transmission electron microscopy16:05BreakMengkun Liu16:15Alex McLeodRevealing nano-plasmonics in 2D materials and correlated oxides at variable temperatures16:40Marco PoliniSNOM and plasmon-magnon interactions in 2D magnetic materials17:05Tetiana SlipchenkoNear-field plasmonic phenomena in doped and charge-neutral graphene17:30BreakJose Lorenzana17:40Ido KaminerFree-electron quantum optics18:05Angel RubioNovel phenomena in two dimensional heterostructure from strongly interacting light-matter hybrids18:30Discussions19:15Posters20:00Closing

2023-03-07 22:09:15高通量单细胞力谱测定！多功能单细胞显微操作技术助力单细胞力学研究: 单程细胞具有复杂生物学性质，它们通过细胞外基质ECM形成紧密的细胞与基质细胞与细胞连接，诸如上皮细胞通过这种特殊的链接方式构成了屏障层保护人体免受外界损伤。因此细胞之间以及细胞基底的粘附力测定对于研究细胞粘附蛋白的机制有着重要意义。使用力学工具测量细胞间以及细胞与基质之间的粘附力始终不是一件容易的事情。首先，由于细胞与基质的作用力仅为nN级别，因此需要力学精度较高的设备才能够测量，而且在这其中较为适合的工具为原子力显微镜（AFM）。原子力显微镜能够提供纳米级别的操作精度并可测量从pN~nN范围的力谱。但是受制于AFM探针本身的限制，需要借助修饰手段才能够让细胞与探针固定到一起，这个过程十分繁琐，并且由于需要大量手工操作很难实现高通量的测量。而不同的细胞由于细胞异质性使得要想确定粘附力需要较多样本才能获得相对准确的值，无法实现高通量测量直接限制了原子力探针在细胞粘附力上的应用。而多功能单细胞显微操作FluidFM技术的出现改变了这一现状，它使用特殊的中空探针能够轻松地通过负压抓取细胞，取得和AFM近似精度的数据，无需在探针上进行任何修饰，不会改变细胞表面的任何通路，从而能够得到接近细胞原生的数据。在实验结束后能够通过正压快速丢弃用过的细胞，具备很高的自动化，能够快速测量细胞粘附力。使用FluidFM对细胞操作的基本流程 FluidFM在粘附力测量上具备显著优势。如图所示，FluidFM能够通过负压将细胞吸附到原子力探针的末端，通过高精度位移台的控制将细胞从基底上分离，并且同时记录FD曲线。通过FD曲线能够获得最大粘附力Fmax和粘附能量Emax。通过高度自动化的控制系统能够在短时间内测量大量细胞粘附力，评估细胞群体分布以及细胞间差异，并且可有效避免传统粘附力测量因准备时间过长而错过最佳测量时间导致的细胞粘附力改变，得到更为精准的结果。近期，Agoston等人使用多功能单细胞显微操作系统FluidFM实现了高通量细胞粘附力测量，对同种细胞不同区以及不同细胞之间的粘附力进行测量和比较。作者首先对Vero和Hela细胞在不同状态下的粘附力进行了测量和比较，总共测量了214个细胞。通过比较明胶涂层上处于单个细胞、孤岛状细胞、致密连接细胞以及单层细胞上游离细胞之间的粘附力，能够明显观测到Vero细胞处于致密连接的细胞粘附力最大，大概在750 nN左右，随着细胞单细胞层的稀疏，细胞粘附力有所下降，而处于细胞层顶部的细胞粘附力最低仅为50 nN左右。这一点充分说明上皮细胞能够在细胞之间形成紧密的连接，而处于细胞层外的细胞则几乎没有粘附力。而对于HeLa这样的肿瘤细胞测量的结果却显示出了截然不同的结果，处于不同状态的细胞有着近似的粘附力，基本都在200 nN左右，这与处于单个游离上皮细胞的粘附力十分接近，表明HeLa细胞在不同环境下仍然具有较高迁徙能力。使用FluidFM对不同区域细胞的FD曲线测定结果和对比通过对这两种细胞的最大粘附力、最大粘附能量、最大拉伸距离和细胞接触面积进行统计分析可以发现，HeLa肿瘤细胞在粘附力和粘附能量上均有所降低，但是当HeLa细胞形成了单层后，两者区别不大。对比Hela和Vero在不同生长状态下的最大粘附力、最大粘附能量、粘附拉伸距离和粘附面积。再进一步对Vero与HeLa细胞最大粘附力与距离和接触面积进行对比，依然可以得到与单独比较粘附力相同的结果，并且最大能量与细胞接触面积的比值中也存在着类似的结果。由此可见肿瘤细胞通过降低自身粘附力从而获得了更好的迁移能力。对不同状态Vero和A549之间的粘附力/粘附距离、粘附力/粘附面积、粘附能量/粘附面积总结细胞粘附力测定在细胞生命科学研究中起着至关重要的作用，然而传统手段中有着各种各样的局限性，主要原因是缺乏一种有效抓取细胞并进行力学测定的手段。现如今FluidFM技术在细胞粘附力测定中的应用，使得研究者们有了一种能够有效、低损的方式抓取细胞，配合原子力显微镜精确测量的特性，真正意义上做到精准、无损、快速的测量单细胞粘附力，帮助研究者寻找细胞粘附力与细胞生命发展、肿瘤细胞转移之间的关系。【参考文献】[1] A. Sancho, M. B. Taskin, L. Wistlich, P. Stahlhut, K. Wittmann, A. Rossi & J. Groll. Cell Adhesion Assessment Reveals a Higher Force per Contact Area on Fibrous Structures Compared to Flat Surfaces. ACS Biomater. Sci. Eng. 2022, 8, 2, 649–658.[2] P.W. Doll, K. Doll, A. Winkel, R. Thelen, R. Ahrens, M. Stiesch & A.E. Guber. Influence of the Available Surface Area and Cell Elasticity on Bacterial Adhesion Forces on Highly Ordered Silicon Nanopillars. ACS Omega. 2022, 7, 21, 17620–17631.[3] Sankaran, S. Jaatinen, L. Brinkmann, J. Zambelli, T. Vörös, J. Jonkheijm, P. Cell adhesion on dynamic supramolecular surfaces probed by fluid force microscopy-based single-cell force spectroscopy. ACS Nano 2017, 11, 3867–3874.[4] Sancho, A. Vandersmissen, I. Craps, S. Luttun, A. Groll, J. A new strategy to measure intercellular adhesion forces in mature cell-cell contacts. Sci. Rep. 2017, 7, 46152.[5] Ines, Lüchtefeld. Alice, Bartolozzi. Julián M. M. Oana, Dobre. Michele, Basso. Tomaso, Zambelli. Massimo, Vassalli. Elasticity spectra as a tool to investigate actin cortex mechanics. J Nanobiotechnol. 2020, 18, 147.[6] Dehullu, J. Valotteau, C. Herman-Bausier, P. Garcia-Sherman, M. Mittelviefhaus, M. Vorholt, J. A. Lipke, P. N. Dufrene, Y. F. Fluidic force microscopy demonstrates that homophilic adhesion by Candida albicans Als proteins is mediated by amyloid bonds between cells. Nano Lett. 2019, 19, 3846–3853.[7] Mittelviefhaus, M. Müller, D. B. Zambelli, T. Vorholt, J. A. A modular atomic force microscopy approach reveals a large range of hydrophobic adhesion forces among bacterial members of the leaf microbiota. ISME J. 2019, 13, 1878–1882.[8] F. Weigl, C. Blum, A. Sancho & J. Groll. Correlative Analysis of Intra- versus Extracellular Cell Detachment Events vis the Alignment of Optical Imaging and Detachment Force Quantification. Adv. Mater. Technol. 2022, 2200195.【相关产品】　　多功能单细胞显微操作系统- FluidFM OMNIUM:https://www.yiqi.com/zt2203/product_386418.html

2023-04-10 14:46:44安心离

2023-02-24 11:28:18高通量、自动化单细胞力谱测定！多功能单细胞显微操作全新技术助力单细胞力学研究: 研究现状单程细胞具有复杂生物学性质，它们通过细胞外基质ECM形成紧密的细胞与基质细胞与细胞连接，诸如上皮细胞通过这种特殊的链接方式构成了屏障层保护人体免受外界损伤。因此细胞之间以及细胞基底的粘附力测定对于研究细胞粘附蛋白的机制有着重要意义。使用力学工具测量细胞间以及细胞与基质之间的粘附力始终不是一件容易的事情。首先，由于细胞与基质的作用力仅为nN级别，因此需要力学精度较高的设备才能够测量，而且在这其中较为适合的工具为原子力显微镜（AFM）。原子力显微镜能够提供纳米级别的操作精度并可测量从pN~nN范围的力谱。但是受制于AFM探针本身的限制，需要借助修饰手段才能够让细胞与探针固定到一起，这个过程十分繁琐，并且由于需要大量手工操作很难实现高通量的测量。而不同的细胞由于细胞异质性使得要想确定粘附力需要较多样本才能获得相对准确的值，无法实现高通量测量直接限制了原子力探针在细胞粘附力上的应用。多功能单细胞显微操作FluidFM技术多功能单细胞显微操作FluidFM技术的出现改变了这一现状，它使用特殊的中空探针能够轻松地通过负压抓取细胞，取得和AFM近似精度的数据，无需在探针上进行任何修饰，不会改变细胞表面的任何通路，从而能够得到接近细胞原生的数据。在实验结束后能够通过正压快速丢弃用过的细胞，具备很高的自动化，能够快速测量细胞粘附力。使用FluidFM对细胞操作的基本流程FluidFM在粘附力测量上具备显著优势。如图所示，FluidFM能够通过负压将细胞吸附到原子力探针的末端，通过高精度位移台的控制将细胞从基底上分离，并且同时记录FD曲线。通过FD曲线能够获得最大粘附力Fmax和粘附能量Emax。通过高度自动化的控制系统能够在短时间内测量大量细胞粘附力，评估细胞群体分布以及细胞间差异，并且可有效避免传统粘附力测量因准备时间过长而错过最佳测量时间导致的细胞粘附力改变，得到更为精准的结果。