2025-01-21 09:35:14高通量多毛细管电泳
高通量多毛细管电泳是一种高效的分离分析技术,它利用多根细小的毛细管同时进行电泳分离,能够大幅度提高分析通量和分离效率。该技术具有分辨率高、灵敏度高、样品消耗少、分析速度快等优点,广泛应用于生物大分子如蛋白质、核酸等的分离分析,以及药物代谢、环境监测、食品安全等领域。通过优化毛细管材料、电泳缓冲液及电压等条件,可进一步提升其分离性能和适用性。

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2023-01-09 17:03:25Ebook 下载 —— ImageXpress 高内涵在高通量筛选中的应用
医药发展依赖于新药开发的进度,而高通量药物筛选(High-Through Screening,HTS)可短时间内筛出数种化合物,有助于加速研究进程,因此高通量药物筛选技术在世界范围内得以广泛应用。学术研究和生物制药公司加大投资力度将会推进高通量药物筛选技术市场的发展,而高通量药物筛选技术的也是生命科学研究乃至整个医药行业发展的原动力。随着技术的进步和先进迭代产品不断增加,预计未来高通量药物筛选技术市场内将迅速增长 , 而高通量药物筛选技术的应用也会随之迅速增加。此外,随着高内涵(High-Content Screening,HCS)系统的不断完善,基于细胞的测定有望得到更多的利用,并且从生化测定向基于细胞测定的方式大幅转变。Molecular Devices 公司的 ImageXpress 系列高内涵系统,不但提供了细胞成像技术实现的所有细节和功能,其完善的激光自动聚焦加图像自动聚焦技术有极大的兼容性和开放性,能够实现未来新型耗材和方法的检测和分析。MetaXpress PowerCore 高内涵并行加速软件系统能够大大提高系统分析通量,加速药物检测的速度,节省时间和人力的成本。这些特性决定了 ImageXpress 系统将会成为高内涵筛选中不可替代的筛选检测终端,为医药事业的发展做出巨大的贡献!Ebook下载请扫描二维码
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2023-03-07 22:09:15高通量单细胞力谱测定!多功能单细胞显微操作技术助力单细胞力学研究
单程细胞具有复杂生物学性质,它们通过细胞外基质ECM形成紧密的细胞与基质细胞与细胞连接,诸如上皮细胞通过这种特殊的链接方式构成了屏障层保护人体免受外界损伤。因此细胞之间以及细胞基底的粘附力测定对于研究细胞粘附蛋白的机制有着重要意义。使用力学工具测量细胞间以及细胞与基质之间的粘附力始终不是一件容易的事情。首先,由于细胞与基质的作用力仅为nN级别,因此需要力学精度较高的设备才能够测量,而且在这其中较为适合的工具为原子力显微镜(AFM)。原子力显微镜能够提供纳米级别的操作精度并可测量从pN~nN范围的力谱。但是受制于AFM探针本身的限制,需要借助修饰手段才能够让细胞与探针固定到一起,这个过程十分繁琐,并且由于需要大量手工操作很难实现高通量的测量。而不同的细胞由于细胞异质性使得要想确定粘附力需要较多样本才能获得相对准确的值,无法实现高通量测量直接限制了原子力探针在细胞粘附力上的应用。而多功能单细胞显微操作FluidFM技术的出现改变了这一现状,它使用特殊的中空探针能够轻松地通过负压抓取细胞,取得和AFM近似精度的数据,无需在探针上进行任何修饰,不会改变细胞表面的任何通路,从而能够得到接近细胞原生的数据。在实验结束后能够通过正压快速丢弃用过的细胞,具备很高的自动化,能够快速测量细胞粘附力。使用FluidFM对细胞操作的基本流程 FluidFM在粘附力测量上具备显著优势。如图所示,FluidFM能够通过负压将细胞吸附到原子力探针的末端,通过高精度位移台的控制将细胞从基底上分离,并且同时记录FD曲线。通过FD曲线能够获得最大粘附力Fmax和粘附能量Emax。通过高度自动化的控制系统能够在短时间内测量大量细胞粘附力,评估细胞群体分布以及细胞间差异,并且可有效避免传统粘附力测量因准备时间过长而错过最佳测量时间导致的细胞粘附力改变,得到更为精准的结果。近期,Agoston等人使用多功能单细胞显微操作系统FluidFM实现了高通量细胞粘附力测量,对同种细胞不同区以及不同细胞之间的粘附力进行测量和比较。作者首先对Vero和Hela细胞在不同状态下的粘附力进行了测量和比较,总共测量了214个细胞。通过比较明胶涂层上处于单个细胞、孤岛状细胞、致密连接细胞以及单层细胞上游离细胞之间的粘附力,能够明显观测到Vero细胞处于致密连接的细胞粘附力最大,大概在750 nN左右,随着细胞单细胞层的稀疏,细胞粘附力有所下降,而处于细胞层顶部的细胞粘附力最低仅为50 nN左右。这一点充分说明上皮细胞能够在细胞之间形成紧密的连接,而处于细胞层外的细胞则几乎没有粘附力。而对于HeLa这样的肿瘤细胞测量的结果却显示出了截然不同的结果,处于不同状态的细胞有着近似的粘附力,基本都在200 nN左右,这与处于单个游离上皮细胞的粘附力十分接近,表明HeLa细胞在不同环境下仍然具有较高迁徙能力。使用FluidFM对不同区域细胞的FD曲线测定结果和对比        通过对这两种细胞的最大粘附力、最大粘附能量、最大拉伸距离和细胞接触面积进行统计分析可以发现,HeLa肿瘤细胞在粘附力和粘附能量上均有所降低,但是当HeLa细胞形成了单层后,两者区别不大。对比Hela和Vero在不同生长状态下的最大粘附力、最大粘附能量、粘附拉伸距离和粘附面积。再进一步对Vero与HeLa细胞最大粘附力与距离和接触面积进行对比,依然可以得到与单独比较粘附力相同的结果,并且最大能量与细胞接触面积的比值中也存在着类似的结果。由此可见肿瘤细胞通过降低自身粘附力从而获得了更好的迁移能力。对不同状态Vero和A549之间的粘附力/粘附距离、粘附力/粘附面积、粘附能量/粘附面积 总结       细胞粘附力测定在细胞生命科学研究中起着至关重要的作用,然而传统手段中有着各种各样的局限性,主要原因是缺乏一种有效抓取细胞并进行力学测定的手段。现如今FluidFM技术在细胞粘附力测定中的应用,使得研究者们有了一种能够有效、低损的方式抓取细胞,配合原子力显微镜精确测量的特性,真正意义上做到精准、无损、快速的测量单细胞粘附力,帮助研究者寻找细胞粘附力与细胞生命发展、肿瘤细胞转移之间的关系。 【参考文献】[1] A. Sancho, M. B. Taskin, L. Wistlich, P. Stahlhut, K. Wittmann, A. Rossi & J. Groll. Cell Adhesion Assessment Reveals a Higher Force per Contact Area on Fibrous Structures Compared to Flat Surfaces. ACS Biomater. Sci. Eng. 2022, 8, 2, 649–658.[2] P.W. Doll, K. Doll, A. Winkel, R. Thelen, R. Ahrens, M. Stiesch & A.E. Guber. Influence of the Available Surface Area and Cell Elasticity on Bacterial Adhesion Forces on Highly Ordered Silicon Nanopillars. ACS Omega. 2022, 7, 21, 17620–17631.[3] Sankaran, S. Jaatinen, L. Brinkmann, J. Zambelli, T. Vörös, J. Jonkheijm, P. Cell adhesion on dynamic supramolecular surfaces probed by fluid force microscopy-based single-cell force spectroscopy. ACS Nano 2017, 11, 3867–3874.[4] Sancho, A. Vandersmissen, I. Craps, S. Luttun, A. Groll, J. A new strategy to measure intercellular adhesion forces in mature cell-cell contacts. Sci. Rep. 2017, 7, 46152.[5] Ines, Lüchtefeld. Alice, Bartolozzi. Julián M. M. Oana, Dobre. Michele, Basso. Tomaso, Zambelli. Massimo, Vassalli. Elasticity spectra as a tool to investigate actin cortex mechanics. J Nanobiotechnol. 2020, 18, 147.[6] Dehullu, J. Valotteau, C. Herman-Bausier, P. Garcia-Sherman, M. Mittelviefhaus, M. Vorholt, J. A. Lipke, P. N. Dufrene, Y. F. Fluidic force microscopy demonstrates that homophilic adhesion by Candida albicans Als proteins is mediated by amyloid bonds between cells. Nano Lett. 2019, 19, 3846–3853.[7] Mittelviefhaus, M. Müller, D. B. Zambelli, T. Vorholt, J. A. A modular atomic force microscopy approach reveals a large range of hydrophobic adhesion forces among bacterial members of the leaf microbiota. ISME J. 2019, 13, 1878–1882.[8] F. Weigl, C. Blum, A. Sancho & J. Groll. Correlative Analysis of Intra- versus Extracellular Cell Detachment Events vis the Alignment of Optical Imaging and Detachment Force Quantification. Adv. Mater. Technol. 2022, 2200195.【相关产品】  多功能单细胞显微操作系统- FluidFM OMNIUM:https://www.yiqi.com/zt2203/product_386418.html
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2023-08-09 13:42:02低至3折 | Clean NGS高通量测序产物纯化及片段筛选磁珠限时促销
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2022-07-04 17:35:41高通量冷冻研磨仪对样品前处理时如何选择研磨珠?
  研磨珠对样品研磨来说是不可或缺的一类耗材应用,但对磨珠的选择也切不可忽视。由于磨球的直径、材质等不同,对样品的研磨效果也有不同,因此在样品前处理实,对磨球的选择还是很重要的。  高通量冷冻研磨仪在被应用研磨时,其对研磨珠和样品的准备通常在5:1左右,磨球和试品的体积不能超过球磨罐体积的百分之80,通常在百分之40到百分之60之间较佳。    在选择应用磨球时,通常会根据磨球的直径来进行选择;当磨球的直径3mm到40mm的范围内去选择。通常,研磨珠通过直径大小可分为大、中、小三个规格的磨球,大磨球可产生更大的动能,使样品可迅速破碎,小磨球可提高样品研磨的密度和一致性。    在样品前处理过程中,不仅要选择球磨罐的应用,还要选择研磨珠的应用,但不同材料的球磨罐匹配的磨球也不同。在使用聚氨酯材料的球磨罐时,是可以与玛瑙磨球、氧化锆、氧化铝等磨球一起使用;在使用聚合物聚乙烯球磨罐时,是可与氧化铝、氧化锆和玛瑙磨球一起应用;在使用聚四氟乙烯球磨罐时,是可与氧化锆、氧化铝、玛瑙磨球一起应用;在使用聚丙烯球磨罐时,是可与氧化锆、玛瑙磨球、氧化铝等一起应用;在使用尼龙球磨罐时,是可与不锈钢板、氧化锆、氧化铝、玛瑙磨球等一起研磨应用的。  在使用高通量冷冻研磨仪开展样品的研磨实验时,不但要牢记掌握研磨机的使用技巧,还要能够正确的选择出所需应用的耗材等,使用不同直径大小的磨球或不同规格的磨球,对样品的研磨处理效果都会不相一致,甚至有时还会影响到样品的研磨效果,所以对磨球的正确选择是很重要的一个选择应用哦!
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2022-01-18 14:24:50琼脂糖预染预制胶电泳试剂盒
琼脂糖预染预制胶电泳试剂盒Prestained Agarose Gel Electrophoresis Kit产品特点及优势:本产品是用于核酸电泳的试剂盒,具有以下特点及优势:1. 省事:您不用再四处采购琼脂糖、核酸染料、电泳液和 loading buffer 等试剂,一个试剂盒全部解决。2. 省时:为您省去了您亲自制胶的繁琐,为您省出一个小时左右的实验时间。3. 省力:琼脂糖预染预制胶采用特制安全可靠的核酸染料预染,电泳过程无需电泳液染色或后染色,简捷方便,即开即用。4. 省心:用本产品电泳得到的 DNA 片段进行胶回收,不影响后续的 DNA 连接等反应。5. 兼容:琼脂糖预染预制胶为 TAE 体系,与实验室常规自制的 TAE 琼脂糖胶完全一致,使用完美衔接,您只需要用您之前的 TAE 电压电泳即可。货号及成分1. 琼脂糖预染预制胶 10 块,规格:8 孔,每孔上样量:25µl,您有六个固定浓度可选,对应货号见下表:当然,您也可以同您的供货商沟通定制您需要的其他浓度!2. 6×DNA Loading Buffer 一支,货号:10052,规格:500µl。6×DNA Loading Buffer 用于琼脂糖凝胶电泳前 DNA 样本的处理,使用时将 1 倍体积的 6×DNA Loading Buffer 与 5 倍体积的 DNA 样品混合均匀后上样。缓冲液组分经过优化,其中的染料溶液包括指示剂溴酚蓝和二甲苯青 FF,电泳时可肉眼监控 DNA 的迁移。甘油确保样本在点样孔底部聚集;EDTA 结合二价金属离子并抑制金属离子依赖性核酸酶。在 1%的琼脂糖凝胶中,溴酚蓝的迁移率与 300bp 的双链线性 DNA 片段大致相同,二甲苯青 FF 的迁移率与 4000bp 的双链线性 DNA 片段大致相同。3. TAE 电泳液一瓶,货号:1060,规格:60ml/瓶。TAE 是广泛使用的核酸电泳缓冲液,主要成分是 Tris-乙酸盐和 EDTA。DNA 分子在高于等电点的缓冲液中带负电,向正极移动。TAE 缓冲液常用于基因组 DNA、大分子超螺旋 DNA、扩增DNA 片段电泳分离,电泳大于 13kb 的片段时用 TAE 缓冲液将取得更好的分离效果。货 号10088 10108 10128 10158 10188 10208浓度0.8% 1.0% 1.2% 1.5% 1.8% 2.0% MYDEER 使用手册运输及保存:琼脂糖预染预制胶电泳试剂盒的小黑盒需要 4℃保存和运输,有效期 12 个月。6×DNA Loading Buffer 可以短时间 4℃运输,长期需要-20℃保存,有效期 12 个月。TAE 电泳液需要常温运输和保存,有效期 24 个月。自备试剂:核酸样品、Marker、去离子水使用方法:1. 在低温条件下 TAE 电泳液会有沉淀物析出,请 37℃水浴溶解并摇晃均匀后使用,不影响使用效果。用去离子水稀释 50 倍(1 mL 本产品加 49 mL 去离子水),用作电泳液,倒入电泳槽中,电泳液以没过胶面 1mm 为宜。2. 取出一块独立包装的琼脂糖预染预制胶,撕掉表面的塑料膜,反转包装,用两手的食指和中指托住塑料壳边缘,开口向下没入电泳液中,然后用两个大拇指轻轻按压塑料壳背面中心部分,琼脂糖预染预制胶就会落入电泳液中,此时的预制胶带孔面向上,移动胶块,使孔侧端靠近电泳槽负极。如样品孔内有气泡,应设法除去。3. 在 DNA 样品中加入 6×DNA loading buffer,混匀后,用移液器将样品混合液缓慢加入被浸没的凝胶加样孔内,同时加入您自己准备的 Marker。4. 接通电源,红色为正极,黑色为负极,切记 DNA 样品由负极往正极泳动 (靠近加样孔的一端为负)。5. 根据指示剂泳动的位置,判断是否终止电泳。6. 电泳完毕,关闭电源,用凝胶成像仪观察电泳条带及其位置,与 Marker 比较扩增产物的大小。电泳胶图:100bp 2% 2000bp 1% 1kb 1%TAE 系列 80v 60min
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