原代上皮细胞培养中出现成纤维细胞污染是常见问题,需结合专用培养基特性和选择性试剂进行综合处理。
专用培养基的抑制作用
1、成分设计抑制成纤维细胞
许多商业化专用培养基通过优化成分直接抑制成纤维细胞生长:
高钙浓度:上皮细胞在高钙(1.8-2.0 mM)环境下可形成紧密连接,而部分成纤维细胞在此条件下增殖受抑。
低血清或无血清配方:减少血清中促成纤维细胞生长的因子,同时通过添加上皮细胞特异性生长因子维持上皮细胞优势。
代谢选择性成分:例如 D - 缬氨酸替换 L - 缬氨酸的培养基,因成纤维细胞缺乏 D - 氨基酸氧化酶而无法利用 D - 缬氨酸,从而抑制其生长。
2、适用性与局限性
组织特异性优化:专用培养基通常针对特定上皮细胞类型(如气道、乳腺、角膜)设计,需根据来源选择。例如,肺上皮细胞专用培养基可能含 KGF(FGF7)促进上皮增殖,同时抑制成纤维细胞活化。
无法完全消除污染:若成纤维细胞污染严重,仅依赖培养基成分可能不足,需结合其他方法。
选择性试剂的应用
1、靶向抑制成纤维细胞的试剂
专用抑制剂:含多种生化成分,通过阻断成纤维细胞增殖信号通路(如 TGF-β/Smad)抑制其生长,同时不影响上皮细胞。
抗代谢药物:如 5 - 氟尿嘧啶(5-FU)或阿糖胞苷(Ara-C),可干扰成纤维细胞 DNA 合成,但需严格控制浓度以避免损伤上皮细胞。
精胺(Spermine):在微摩尔浓度下选择性诱导成纤维细胞凋亡,而对上皮细胞毒性较低。
2、细胞周期抑制剂
丝裂霉素 C(Mitomycin C):处理饲养层细胞(如小鼠胚胎成纤维细胞)可阻断其分裂,常用于共培养体系中抑制成纤维细胞过度增殖。
Y-27632(ROCK 抑制剂):通过抑制肌动蛋白收缩减少成纤维细胞贴壁,同时促进上皮细胞克隆形成。
物理分离与培养策略
人呼吸道上皮细胞(货号:FH-H036)
1、差速消化法
原理:成纤维细胞对胰酶更敏感,消化时先于上皮细胞脱落。
操作:
培养皿中加入 0.25% 胰酶作用 10-30 秒,立即终止消化,收集悬浮的成纤维细胞。
剩余贴壁的上皮细胞继续培养,重复 2-3 次可显著降低污染。
2、差速贴壁法
原理:成纤维细胞贴壁速度快(10-30 分钟),上皮细胞贴壁较慢(>2 小时)。
操作:
消化后的细胞悬液接种至新培养皿,静置 30 分钟后,弃去含成纤维细胞的上清。
剩余未贴壁的上皮细胞转移至包被胶原蛋白或多聚赖氨酸的培养皿,促进其贴壁。
3、密度调控
高细胞密度接种:上皮细胞在高密度下通过接触抑制减少成纤维细胞侵袭,同时分泌抑制性细胞因子(如 IL-1α)抑制成纤维细胞活性。
降低血清浓度:将血清浓度从 10% 降至 2-5%,减少促成纤维细胞生长因子,同时补充上皮细胞必需的生长因子(如 EGF、胰岛素)。
综合处理流程
1、初期污染
培养基替换:立即更换为专用培养基(如含 KGF 的肺上皮培养基),连续培养 3-5 天,每日观察。
差速消化:结合差速消化法(每次传代时消化 10 秒),逐步富集上皮细胞。
2、中重度污染
选择性试剂添加:在专用培养基中加入抑制剂,处理 2-3 周。
联合物理分离:每周进行 1 次差速贴壁,同时使用丝裂霉素 C 处理饲养层细胞(若共培养)。
3、长期维护
定期检测:通过免疫染色(如细胞角蛋白 + 波形蛋白双染)监测纯度,确保上皮细胞比例 > 95%。
低血清传代:传代时使用含 2% 血清的培养基,并缩短消化时间(<30 秒)以减少成纤维细胞残留。
注意事项
避免过度依赖抗生素:青霉素 / 链霉素仅抑制细菌,对成纤维细胞无效,且可能掩盖污染进展。
组织来源差异:不同上皮细胞(如皮肤、肠道)对处理方法的敏感性不同,需优化参数。例如,皮肤上皮可尝试精胺处理,而气道上皮更适合差速贴壁。
及时复苏备份:若污染无法控制,建议复苏早期冻存的细胞,避免反复处理导致细胞特性改变。
总结
专用培养基是抑制成纤维细胞的基础,其成分设计可显著降低污染程度。但在严重污染时,必须结合选择性试剂(如精胺)和物理分离方法(差速消化 / 贴壁),形成多维度处理策略。通过定期监测和参数优化,可有效建立高纯度的原代上皮细胞培养体系。
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