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如何制备核酸琼脂糖凝胶,操作中应注意什么

陌生的星空 2017-09-08 08:26:08 978  浏览

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  • 幻灭重生818 2017-09-09 00:22:46
      琼脂糖凝胶电泳是常用的分离和检测方法,琼脂是Z常用的载体支持物,核酸分子具有电荷效应和分子筛效应,利用此特性可达到分离检测的目的。   一、琼脂糖凝胶的特点   天然琼脂(agar)是一种多聚糖,主要由琼脂糖(agarose,约占80%)及琼脂胶(agaropectin)组成。琼脂糖是由半乳糖及其衍生物构成的中性物质,不带电荷,而琼脂胶是一种含硫酸根和羧基的强酸性多糖,由于这些基团带有电荷,在电场作用下能产生较强的电渗现象,加之硫酸根可与某些蛋白质作用而影响电泳速度及分离效果。因此,目前多用琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳,其优点如下。   1. 琼脂糖凝胶电泳操作简单,电泳速度快,样品不需事先处理就可以进行电泳。   2. 琼脂糖凝胶结构均匀,含水量大(约占98%~99%),近似自由电泳,样品扩散较自由电流,对样品吸附极微,因此电泳图谱清晰,分辨率高,重复性好。   3. 琼脂糖透明无紫外吸收,电泳过程和结果可直接用紫外光灯检测及定量测定。   4. 电泳后区带易染色,样品极易洗脱,便于定量测定。制成干膜可长期保存。   目前,常用琼脂糖作为电泳支持物,分离蛋白质和同工酶。将琼脂糖电泳与免疫化学相结合,发展成免疫电泳技术,能鉴别其他方法不能鉴别的复杂体系,由于建立了超微量技术,0.1ug蛋白质就可检出。   琼脂糖凝胶电泳也常用于分离、鉴定核酸,如DNA鉴定,DNA限制性内切核酸酶图谱制作等。由于这种方法操作方便,设备简单,需样品量少,分辨能力高,已成为基因工程研究中常用实验方法之一。   二、DNA的琼脂糖凝胶电泳   琼脂糖凝胶电泳对核酸的分离作用主要是依据它们的相对分子量质量及分子构型,同时与凝胶的浓度也有密切关系。   1、核酸分子大小与琼脂糖浓度的关系   ① DNA分子的大小 在凝胶中,DNA片段迁移距离(迁移率)与碱基对的对数成反比,因此通过已知大小的标准物移动的距离与未知片段的移动距离时行比较,便可测出未知片段的大小。但是当DNA分子大小超过20kb时,普通琼脂糖凝胶就很难将它们分开。此时电泳的迁移率不再依赖于分子大小,因此,就用琼脂糖凝胶电泳分离DNA时,分子大小不宜超过此值。   ② 琼脂脂糖的浓度 如下表所示,不同大小的DNA需要用不同浓度的琼脂糖凝胶进行电泳分离。   表 琼脂糖浓度与DNA分离范围琼脂糖浓度/%0.30.60.70.91.21.52.0线状DNA大小/kb60-520-110-0.87-0.56-0.44-0.23-0.1   2、核酸构型与琼脂糖凝胶电泳分离的关系   不同构型DNA的移动速度次序为:供价闭环DNA(covalently closed circular,cccDNA)>直线DNA>开环的双链环状DNA。当琼脂糖浓度太高时,环状DNA(一般为球形)不能进入胶中,相对迁移率为0(Rm=0),而同等大小的直线双链DNA(刚性棒状)则可以长轴方向前进(Rm>0),由此可见,这三种构型的相对迁移率主要取决于凝胶浓度,但同时,也受到电流强度、缓冲液离子强度等的影响。   3、电泳方法   ① 凝胶类型   用于分离核酸的琼脂糖凝胶电泳可分为垂直型及水平型(平板型)。水平型电泳时,凝胶板完全浸泡在电极缓冲液下1-2mm,故又称为潜水式。目前更多用的是后者,因为它制胶和加样比较方便,电泳槽简单,易于制作,又可以根据需要制备不同规格的凝胶板,节约凝胶,因而较受欢迎。   ② 缓冲液系统   缺少离子时,电流太小,DNA迁移慢;相反,高离子强度的缓冲液由于电流太大会大量产热,严重时,会造成胶熔化和DNA的变性。   常用的电泳缓冲液有EDTA(pH8.0)和Tris-乙酸(TEA),Tris-硼酸(TBE)或Tris-磷酸(TPE)等,浓度约为50mmol/L(pH7.5~7.8)。电泳缓冲液一般都配制成浓的贮备液,临用时稀释到所需倍数。   TAE缓冲能力较低,后两者有足够高的缓冲能力,因此更常用。TBE浓溶液长期贮存会出现沉淀,为避免此缺点,室温下贮存5×溶液,用时稀释10倍0.5×工作溶液即能提供足够缓冲能力。   ③ 凝胶的制备   以稀释的电极缓冲液为溶剂,用沸水浴或微波炉配制一定浓度的溶胶,灌入水平胶框或垂直胶膜,插入梳子,自然冷却。   ④ 样品配制与加样   DNA样品用适量Tris-EDTA缓冲液溶解,缓冲液内含有0.25%溴酚蓝或其他指示染料,含有10%-15%蔗糖或5%~10%甘油,以增加其比重,使样品集中。为避免蔗糖或甘油可能使电泳结果产生U形条带,可改用2.5%Ficoll(聚蔗糖)代替蔗糖或甘油。   ⑤ 电泳   琼脂糖凝胶分离大分子DNA实验条件的研究结果表明,在低浓度、低电压下,分离效果较好。在低电压条件下,线性DNA分子的电泳迁移率与所用的电压呈正比。但是,在电场强度增加时,较大的DNA片段迁移率的增加相对较小。因此随着电压的,电泳分辨率反而下降,为了获得电泳分离DNA片段的Z大分辨率,电场强度不宜高于5V/cm。   电泳系统的温度对于DNA在琼脂糖凝胶中的电泳行为没有显著的影响。通常在室温下进行电泳,只有当凝胶浓度低于0.5%时,为增加凝胶硬度,可在4℃进行电泳。   ⑥ 染色和拍照   常用荧光染料溴乙锭(EB)染色,在紫外光下观察DNA条带,用紫外分析仪拍照,或用凝胶成像系统输出照片,并进行有关的数据分析。   注意事项:电泳中所使用的染料EB是致癌物质,一定要小心,避免其接触皮肤等,进行电泳操作的时候一定要带手套,手套要及时更换,现在也除了一些EB的替代物,如Goldview等。

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本篇文章聚焦制备液相色谱仪(HPLC)的系统性操作要点,围绕前期准备、系统配置、方法设定、数据处理及日常维护,提供可执行的步骤与注意事项。中心思想是通过规范化的操作流程和严密的记录管理,在确保安全与合规的前提下,提升仪器的稳定性与重复性,降低变异来源。


在仪器环境与基础准备方面,先确认工作台平整、电源接地良好,避开震动源与强磁场区。清点随器具、耗材与流动相的批号,确保校准证书齐全。操作人员应穿戴实验服、护目镜与手套,熟知应急处置流程。仪器开机前进行自诊断,检查泵、进样阀、检测单元的密封性与泄漏情况,确保系统压力在额定范围内。


流动相的制备与管理是核心环节。按方法要求配制移动相,注意离子强度、pH及有机成分比例,使用高纯溶剂并过滤、除气,必要时以超声或抽真空去除气泡。记录每次配制批次、体积和温度条件,避免重复使用老溶剂导致峰形变差。对于梯度洗脱,提前设定梯度程序、等度时间和流速,确保平衡时间充分,使柱前系统达到稳定状态。


柱与进样系统的准备要点包括柱前平衡与柱效检验。新柱需要在流动相条件下进行充分平衡,确保起始体积、体积流速和柱温一致。进样阀与进样量应与方法相符,初次分析建议以低体积、分段注射的方式测试梯度与线性范围,避免因样品注入量过大引发峰尾或拖尾。对自动进样器进行清洁与防污染处理,避免样品残留影响后续分析。


方法设定要且具备可重复性。设定检测波长、温度、流速、柱温控制与进样体积,并建立系统适用性测试(system suitability)方案,如保留时间的一致性、峰面积的相对标准偏差等指标。对定量分析,建立线性范围、检量限和定量下限,确保标准曲线的稳定性与可追溯性。记录方法版本、列举参考物质和校准日,方便后续复现与审计。


数据采集与处理要注重完整性与透明度。在每次分析前后记录仪器状态、基线噪声、灵敏度等参数,保存原始数据、处理参数和图谱解读过程。对复杂样品进行峰的分离与归属时,结合对照标准品和质控样本,确保定性与定量结果的可信度。对于异常结果,及时回溯系统日志、流动相批次和样品信息,必要时重复分析以确认结果稳定性。


日常维护与故障排除是保障长期稳定的保障线。定期检查密封件、泵密封、管路连接处是否有微渗漏,清洗或更换耗材;对检测单元进行光路对准与清洁,防止污染导致灵敏度下降。柱子保养包括去活化、再生或更换,以及避免高pH环境对某些柱的侵蚀。对软件与固件进行版本管理,记录变更与维护时间,确保数据完整性与系统安全。


综合而言,制备液相色谱仪的操作需要结构化的步骤、严谨的记录和持续的质量控制。通过规范化的流程、可靠的设备维护与透明的数据管理,能够实现高效、可重复且可追溯的分析结果。执行上述要点的保持对新方法与新材料的关注,以持续提升分析能力和实验室的合规水平。


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