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仪器网>产品中心> 翌圣生物科技(上海)股份有限公司>蛋白研究3>蛋白纯化>Streptactin Plus Agarose Resin 4FF Strep(Ⅱ)标签蛋白琼脂糖纯化树脂(耐生物素版)

Streptactin Plus Agarose Resin 4FF Strep(Ⅱ)标签蛋白琼脂糖纯化树脂(耐生物素版)

面议 (具体成交价以合同协议为准)
翌圣生物 2026-01-09 10:22:40
售全国 入驻:3年 等级:银牌 营业执照已审核
同款产品:蛋白纯化(151件)
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产品详情:

产品简介

 

Strep-Tag II为8个氨基酸的小标签(WSHPQFEK),由于标签小,仅为1.06 kDa左右,不影响融合后蛋白质的结构和功能,因此无需去除该标签。其特异性高,单步纯化纯度高,纯化条件温和,蛋白两端均可融合等突出特点迅速得到了广泛应用。Twin Strep-tag II是一个顺序排列的两个Strep-tag II序列(通过内部氨基酸连接),该标签能够像Strep-tag II一样进行温和、快速的纯化。

Streptactin Plus Agarose Resin 4FFCat#20795ESStreptactin Agarose Resin 4FFCat#20495ES的升级版,具体升级信息请参考下表:

产品货号

20795ES

20495ES

产品名称

Streptactin Plus Agarose Resin 4FF

Strep(Ⅱ)标签蛋白琼脂糖纯化树脂(耐生物素

Streptactin Agarose Resin 4FF

Strep(Ⅱ)标签蛋白琼脂糖纯化树脂

基质

高度交联的4%琼脂糖凝胶

高度交联的4%琼脂糖凝胶

配体

Streptactin突变体

Streptactin

Strep II标签结合能力

8-10 mg Strep-Tag II 蛋白/mL 基质

3-5 mg Twin Strep-tag II蛋白/mL 

与生物素结合能力

与生物素的亲和力大幅削弱,样品中低浓度(50 μmol/L)的D-生物素不会影响 Strep II 标签蛋白与Streptactin Plus的结合效果。

与生物素结合较牢固,样品中少量D-生物素就会影响 Strep II 标签蛋白与Streptactin 的结合效果。

洗脱方面

可以使用D-生物素进行洗脱,且使用后可采用 10~50 mM NaOH 进行再生再生前后载量变化较小

使用脱硫生物素作为洗脱液,1 mM HABA或0.1 M NaOH再生前后载量变化较小。

使用D-生物素作为洗脱液,需使用高浓度NaOH(1 M)再生,再生后载量只能达到初始载量的50%左右,对填料损害较大。

本产品对 Strep II 标签具有高度特异性,一般只需一步纯化就能获得高纯度的蛋白质样品。可用于各种表达系统,包括杆状病毒、哺乳动物细胞、酵母和细菌中含有Strep-Tag II标签蛋白纯化,同时该树脂也可用于 Twin Strep-Tag II 标签纯化。

 

产品性质

 

基质

高度交联的4%琼脂糖凝胶

配体

Streptactin突变体

粒径

45-165 µm

载量

8-10 mg Strep-Tag II 蛋白/mL 基质

最大流速

300 cm/h

储存缓冲液

20%乙醇的1×PBS

 

储存条件

 

2~8℃保存,有效期2年。

 

使用说明

 

1 缓冲液的准备

所用水和缓冲液在使用之前建议用 0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤。

平衡/洗杂液: 100 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, pH 8.0

或PBS:2.67 mM KCl137.07 mM NaCl10 mM Na2HPO4 1.84 mM KH2PO4 pH7.4。

洗脱液: 在平衡/洗杂液中添加10~50 mM D-生物素混匀即可。

再生液:10~50 mM NaOH洗脱剂为D-生物素 

 样品准备

样品在上样前建议用 0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤,防止堵塞柱子。

3 样品纯化

3.1重力柱纯化

3.1.1装柱

1)取合适规格的重力层析柱装入下垫片加入适量纯水润洗柱管和垫片,待水从下出口流出后马上关闭下出口。

2)将Streptactin Plus Agarose Resin 4FF混合均匀,用枪取适量浆液加入柱中,打开下出口流干保护液。

3)加入适量去离子水冲洗介质,待柱管中液体重力流干后,关闭下出口。

4)装入润洗后的上垫片,确保垫片与填料之间无空隙,且保持水平,注意不可用力要垫片,防止损坏柱料。

3.1.2 平衡:5倍柱体积的平衡/洗杂液进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同缓冲体系下,重复2-3次。

3.1.3 上样:将样品加入平衡好的柱子中,样品保留至少2min,保证样品和介质充分接触,可以多次上样增加结合效率。

【注】注意收集流出液,用于后续SDS-PAGE检测蛋白的结合情况。 

3.1. 4 平衡/洗杂:10倍柱体积的平衡/洗杂液进行洗杂,去除非特异性结合的杂蛋白,收集洗杂液。

3.1. 5 洗脱:再用5倍柱体积的洗脱液进行洗脱目的蛋白,分管收集。

3.2中压层析柱纯化

3.2.1装柱

1)用去离子水冲洗层析柱底筛板与接头,确保柱底筛板上无气泡,关闭柱底出口,并在柱底部留出 1~2 cm 的去离子水。

2)将Streptactin Plus Agarose Resin 4FF悬浮起来,小心的将浆液连续地倒入层析柱中。用玻璃棒沿着柱壁倒入浆液可减少气泡的产生。 

3)打开层析柱底部出口,开启泵,使其在设定的流速下进行。最初应让缓冲液缓慢流过层析柱,然后缓慢增加至最终流速,这样可避免液压对所形成柱床的冲击,也可以避免柱床形成的不均匀。如果达不到推荐的压力或流速,可以用你所使用泵的最大流速,这样也可以得到一个很好的装填效果。当柱床高度稳定后,在最后的装柱流速下至少再上3倍柱床体积的去离子水,标上柱床高度。 

【注】在随后的色谱程序中,不要超过最大装柱流速的 75%。

3.2.2 平衡:使用至少 5 倍柱床体积的平衡/洗杂液平衡色谱柱。 

3.2.3 上样:利用泵或样品环上样。

注意:样品的粘度增加使得即使上样体积很少,也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的

样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。 

3.2. 4 平衡/洗杂:用平衡/洗杂液冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少 10~15 个柱体积)。 

3.2. 5 洗脱:使用 5~10 倍柱体积的洗脱液洗脱,收集洗脱液,即目的蛋白组分。

4 填料保存

Streptactin Plus Agarose Resin 4FF每次使用后都应进行1次再生,去除结合在介质上的D-生物素,以确保结果的一致性。

1)3-5倍柱体积的去离子水清洗柱子;

2)3-5倍柱体积的10~50 mM NaOH再生,3 min接触时间;

3)3-5 倍柱体积去离子水清洗;

填料再生清洗后保存在20%乙醇中,2~8℃保存。

 

注意事项

 

  1. 本产品仅作科研用途  
  2. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

Ver.CN20241129

 

 

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