对细胞实验新手来说,初步判断细胞状态是避免后续实验翻车的关键第一步。核心判断标准主要围绕细胞形态、生长速度、培养基状态三个维度,核心逻辑是用显微镜观察实际特征,用细胞资料确认是否符合标准。
用显微镜观察 3个核心视觉特征
显微镜是直接观察工具,建议用10倍物镜看整体(密度、污染) ,20-40倍物镜看细节(形态、活死) ,重点关注以下 3 点:
1. 细胞形态
贴壁细胞:观察是否铺展均匀、边缘清晰。比如 HeLa 细胞正常是梭形或多角形,若变成皱缩的圆形、边缘模糊,或出现大量细长 “伪足”,可能状态异常。
悬浮细胞:观察是否圆润透亮、大小均一。若出现明显聚团(非自然轻微聚集)、细胞变形(如扁扁的、有凹陷),或胞内出现大量黑色颗粒,可能状态不佳。
2. 活死细胞比例
简单方法:直接观察“透亮 vs 灰暗”—— 活细胞胞质透亮,光线能穿透;死细胞胞质灰暗、反光弱,甚至会漂浮在培养基表面(贴壁细胞)。
精准方法:用台盼蓝染色(显微镜下操作),活细胞不染色,死细胞被染成蓝色,正常状态下死细胞比例应<5%。
3. 培养基与背景
看培养基:正常含酚红的培养基是浅红色,若突然变黄(pH过低,代谢过快或污染)、变紫(pH过高,瓶盖过紧),或出现浑浊(细菌污染)、白色/绿色菌丝(真菌污染),直接判断异常。
看背景:显微镜下若有大量快速移动的小点(细菌)、或丝状/颗粒状异物(杂质或污染),即使细胞形态看似正常,也需警惕。
用细胞资料对照确认是否正常”
细胞资料是“标准参照物”,常见来源包括细胞系说明书(购买时附带)、细胞出库图、ATCC等数据库(官网可查)、文献中该细胞的培养描述,重点对照 3 类信息:
1. 对照形态标准
查资料:找到该细胞的标准形态图或描述,比如“CHO 细胞贴壁培养时呈上皮样,梭形为主”。
做对比:若显微镜下观察到的细胞形态与资料描述差异大(如CHO细胞全变成圆形贴壁),即使没有明显“坏相”,也可能是细胞分化或变异,状态不合格。
2. 对照生长特性
查资料:确认该细胞的常规倍增时间(如HepG2细胞约48小时)、最佳密度范围(如贴壁细胞汇合度70%-80%时状态最好)。
做对比:若实际培养中,细胞2天就长满(远超倍增时间,可能污染或传代密度过高),或5天还没到50%汇合度(生长停滞,可能营养不足或细胞老化),均为状态异常。
3. 对照培养条件
查资料:确认该细胞的必需条件,比如“是否需要 CO?(多数贴壁细胞需5%CO?)、最佳温度(37℃)、专用培养基(如HeLa用 DMEM,淋巴瘤细胞用RPMI-1640)”。
做对比:若显微镜观察到细胞状态差,先核对培养条件是否与资料一致(比如误将需CO?的细胞放在普通培养箱),避免因环境错误误判细胞本身。
关键流程:显微镜+资料的验证
先查资料:提前 10 分钟调出该细胞的资料,记住核心标准(形态、倍增时间、培养基)。
再用显微镜观察:按“形态→活死→培养基”的顺序观察,每一步都对照资料确认。
排除干扰:若观察到疑似异常(如细胞略皱缩),先查资料确认“传代后是否有暂时收缩期”(多数贴壁细胞传代后 4-6 小时才铺展),避免误判。
| 判断维度 | 正常细胞状态 | 异常细胞状态 |
| 细胞形态 | 形态规则统一,符合该细胞系特征(如贴壁细胞铺展均匀、有清晰边缘;悬浮细胞圆润透亮、大小一致) | 形态皱缩、变形、边缘模糊;细胞聚团严重(非细胞系本身特性);出现大量不规则碎片 |
| 生长速度 | 符合该细胞系的常规倍增时间(如 HeLa 细胞约 24 小时,CHO 细胞约 18-24 小时),增殖稳定 | 生长突然加速(可能是污染或细胞系变异);生长停滞或死亡(可能是营养耗尽、环境不适或污染) |
| 培养基状态 | 清澈透亮,颜色符合标准(通常含酚红的培养基呈浅红色,pH 值稳定) | 培养基浑浊、发黄 / 发暗(细菌污染常导致浑浊,细胞代谢异常会让 pH 值骤变);出现白色 / 黑色小点或菌丝(真菌污染) |
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