弗雷德里克·贝克是法国普瓦捷大学的生理学教授。他的研究主要集中在氯离子通道(尤其是 CFTR 通道)的药理学和功能方面,以及其在囊性纤维化中的作用。他的研究团队正在筛选小分子,旨在找到针对囊性纤维化患者的新型治疗方法。
囊性纤维化概况:囊性纤维化(Cystic Fibrosis, CF)是一种严重的常染色体隐性遗传疾病,全球范围内约存在100,000名患者。该疾病由CFTR基因突变引起。CFTR蛋白作为阴离子通道,负责调节氯离子和碳酸氢盐跨上皮细胞膜的转运;其功能缺陷可导致肺部、胰腺等多个器官的黏液异常积聚。
*CFTR突变与治疗挑战:目前已发现超过2000种CFTR突变,这些突变通过多种机制导致蛋白功能异常,例如蛋白错误折叠、过早降解或门控异常等。现有CFTR调节剂(如ORKAMBI?和TRIKAFTA?)对部分突变患者有效,然而许多携带罕见突变的患者仍无法获益,亟需开发新型调节剂。
传统方法缺陷:传统手动膜片钳技术虽能提供高分辨率数据,但其通量较低、操作劳动密集型,难以满足大规模CFTR突变研究及小分子调节剂高通量筛选的需求。
自动化膜片钳(APC)优势:自动化膜片钳(APC)技术作为一种高通量替代方案,可同时记录1至384个细胞的离子通道电流,并具备自动化数据分析功能,显著提升了实验效率。该技术已在制药企业、生物技术公司及学术界获得广泛应用。
Patchliner系统(Nanion Technologies)为全自动膜片钳平台,可同步记录4个或8个细胞。该系统配备HEKA EPC10放大器,能够精确控制移液器速度、实时调整实验方案,并可选配温度控制和动态钳位等灵活附加组件。自2006年推出以来,Patchliner已获得学术界、工业界及合同研究组织(CRO)的广泛认可。
系统验证:Becq团队在购置APC系统前进行了对比研究,证实Patchliner在记录CFTR氯离子电流方面与传统手动膜片钳结果具有高度一致性,同时具备更高的通量和标准化的实验方案。该系统适用于CFTR功能与药理学分析,以及治疗性调节剂效果表征等研究。
*CFTR记录特殊处理:在APC实验中,氟化物常被用于改善封接电阻。然而,氟化物可通过激活腺苷酸环化酶、增加环磷酸腺苷(cAMP)生成及蛋白激酶A磷酸化水平来刺激CFTR活性,从而干扰调节剂研究。为此,Becq团队在CFTR研究中采用磷酸盐或硫酸盐替代氟化物作为内液成分。
小 CFTR 结合剂(SBCs)对 F508del-CFTR 的增效作用。每个图版展示了测试条件和 CFTR(inh)-172 条件下的代表性轨迹以及在全细胞膜片钳配置(自动膜片钳)中获得的 I/V 曲线的分组数据,该实验在单独使用 fsk(1 μM)(A)或在 fsk(1 μM)基础上再添加 SBC040(30 μM)(B)、SBC219(10 μM)(C)或 VX-770(0.1 μM)(D)的 F508delCFTR HeLa 细胞中进行。平均电流值已根据细胞电容进行标准化,并以 pA/pF 表示。
学生培训:Becq实验室每年通过组织3-4人规模的研讨会培训硕士生。培训内容包括理论讲解与实践操作,学员使用简化方案记录CFTR激活与抑制过程。该培训旨在使学生掌握Patchliner系统操作原理、理解细胞膜质量的重要性、熟悉系统特性(如移液速度、温度控制等),并结合手动膜片钳培训,培养学生在电生理学领域的理论与实践技能。
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