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NANION产品生物力学应用典型实验方案

来源:耐尼恩技术(北京)有限公司 更新时间:2026-01-07 11:15:23 阅读量:7
导读:以全自动膜片钳为核心,扩展至细胞收缩力、转运体、脂双层与活细胞分析等系统,在生物力学领域聚焦膜力学 - 电生理耦合与细胞 - 组织级力学 - 功能关联,适用于心血管、神经、肌肉、药物研发等场景,前景在于高通量整合、类器官 / 芯片适配与临床转化加速

一、实验基础信息

1.1实验目的

基于NANION核心产品(如SyncroPatch系列、FLEXcyte 96、CardioExcyte 96等),精准表征细胞/组织的生物力学特性与电生理功能的耦合关系;探究药物、机械刺激等干预因素对生物力学-电生理协同功能的影响;为疾病建模、药物筛选、机制研究等生物力学相关课题提供标准化实验数据支撑。

1.2核心原理

利用NANION产品高通量、多参数同步检测的技术优势,通过膜片钳记录离子通道电信号、柔性基底检测细胞收缩力、场电位与搏动同步监测等核心功能,捕捉生物力学行为(如细胞收缩、膜张力变化)与电生理信号(如离子电流、动作电位)的动态关联,揭示“力-电转导”等生物力学核心机制。

1.3适用范围

本模板适用于基于NANION产品的心肌细胞、平滑肌细胞、神经细胞等可收缩/力学响应细胞的生物力学研究;可适配药物心脏毒性评价、肌肉疾病力学表型筛选、机械敏感通道机制探究、类器官力学-功能关联分析等应用场景。

1.4核心仪器与耗材

  • 核心仪器:NANION SyncroPatch 384(全自动膜片钳系统)、NANION FLEXcyte 96(细胞收缩力测量系统)、NANION CardioExcyte 96(心肌细胞搏动与场电位同步记录系统)、CO?培养箱、超净工作台、低温离心机、精密移液器、超纯水机。
  • 专用耗材:SyncroPatch 384专用芯片、FLEXcyte 96专用PDMS膜板(FLX-96板)、CardioExcyte 96专用细胞培养板、无菌移液枪头、离心管、细胞培养瓶。
  • 试剂与样本:目标细胞样本(如hiPSC-CMs、原代心肌细胞、平滑肌细胞)、胎牛血清、青霉素-链霉素双抗、细胞培养液、实验缓冲液(如Tyrode液、HBSS缓冲液)、纤连蛋白(用于耗材包被)、实验药物/刺激剂、溶剂对照品。

二、实验前准备

2.1仪器调试与校准

1.通用调试:所有仪器提前30min开机预热,启动配套控制软件(如Patch Control 384、CardioExcyte Control),检查仪器通讯状态、液路通畅性、温度与CO?控制模块稳定性,确保设备无故障报警。
2.专项校准:① SyncroPatch 384:进行放大器校准,验证封接电阻、串联电阻检测精度,确保封接电阻阈值可稳定达到≥1GΩ;② FLEXcyte 96:校准PDMS膜偏转检测灵敏度,确保皮牛级力分辨率,无背景噪音干扰;③ CardioExcyte 96:调试场电位记录电极灵敏度与搏动信号采集光学模块,确保信号采集无杂波。
3.联用同步性校准:若涉及多仪器联用(如SyncroPatch 384+FLEXcyte 96),通过软件时序匹配功能,校准各仪器数据采集起始时间,确保时间误差≤1s,保证力学信号与电生理信号的时序一致性。

2.2耗材预处理

1.耗材灭菌与清洁:专用芯片、PDMS膜板等耗材拆封后,若需二次清洁,用无菌DPBS冲洗2-3次,置于超净台内晾干;非无菌耗材需经高压蒸汽灭菌或紫外线消毒,确保无微生物污染。
2.细胞黏附包被:提前1天制备10-15μg/ml纤连蛋白工作液(用无Ca2?/Mg2? DPBS稀释),向FLEXcyte 96板、CardioExcyte 96板每孔加入100μl,37℃、5%CO?培养箱孵育过夜;使用前吸弃包被液,用无菌DPBS冲洗2次,晾干备用。SyncroPatch 384芯片根据细胞类型,可选择预包被或实验前现场包被。

2.3试剂与样本准备

1.缓冲液配制:实验缓冲液(如Tyrode液)配方:NaCl 140mM、KCl 5.4mM、CaCl? 1.8mM、MgCl? 1mM、Glucose 10mM、HEPES 10mM,用NaOH调节pH至7.35-7.45,0.22μm滤膜过滤除菌,4℃冷藏保存,使用前恢复至37℃。
2.药物配制:根据实验需求,用实验缓冲液将药物稀释为5-6个梯度浓度(如1nM、10nM、100nM、1μM、10μM),设置溶剂对照组(含等量药物溶剂,如DMSO),确保溶剂终浓度≤0.1%(避免影响细胞活性),药物溶液现配现用。
3.细胞制备:取对数生长期或分化成熟的目标细胞,用0.25%胰酶消化(贴壁细胞),含血清培养液终止消化,1000rpm离心5min,弃上清;用实验缓冲液重悬细胞,调整细胞浓度至1×10?-5×10? cells/ml,台盼蓝染色检测细胞活力≥90%,备用。

三、核心实验流程(分单仪器与联用方案)

3.1单仪器实验流程(以FLEXcyte 96细胞收缩力检测为例)

1.细胞接种:向预处理后的FLEXcyte 96板每孔加入100μl细胞悬液,轻轻晃动培养板使细胞均匀分布于PDMS膜表面;37℃、5%CO?培养箱培养5-7天,期间每48h更换一次培养液,直至细胞形成同步收缩的单层网络。
2.基线数据采集:将培养板转移至FLEXcyte 96检测位,通过CardioExcyte Control软件设置采集参数(采集频率100Hz、检测阈值0.1μm、采集时长10min),启动基线收缩力数据采集,确保信号稳定(收缩幅度变异系数≤10%)。
3.药物刺激与数据采集:通过液体处理模块向每孔加入100μl对应浓度药物溶液(终浓度按梯度设置),溶剂对照组加入等量实验缓冲液;药物作用5min后启动数据采集,持续记录20min;每完成一个浓度组检测,用实验缓冲液洗涤3次(每次200μl/孔),再进行下一组实验。
4.实验结束:采集完成后,保存原始数据,按规范清理仪器液路,关闭设备。

3.2多仪器联用流程(以SyncroPatch 384+FLEXcyte 96为例)

1.细胞共培养:按3.1.1方法将细胞接种于FLEXcyte 96板,培养至形成同步收缩网络。
2.基线同步采集:① 将FLEXcyte 96板置于检测位,启动收缩力基线采集(10min);② 同时从FLEXcyte 96板各孔吸取50μl细胞悬液,转移至SyncroPatch 384专用芯片,设置膜片钳参数(电压钳模式、钳位电压-70mV、采样频率10kHz),采集离子通道基线电流数据(10min),筛选封接成功细胞(封接电阻≥1GΩ)。
3.药物刺激与联用采集:向FLEXcyte 96板加入药物溶液,作用5min后,同步启动SyncroPatch 384和FLEXcyte 96数据采集,持续20min;按浓度梯度依次检测,每组检测后充分洗涤。
4.数据归档:分别保存两仪器原始数据,命名规则:“细胞类型-实验日期-药物名称-浓度-重复次数-仪器类型”,确保数据可追溯。

3.3关键仪器参数设置参考

仪器型号

核心参数类别

标准设置值

调整说明

SyncroPatch 384

记录模式、钳位电压、采样频率、封接电阻

电压钳/电流钳;-70mV(基线);10kHz≥1GΩ

记录动作电位选电流钳;根据目标离子通道调整刺激电压范围(-120mV~+60mV

FLEXcyte 96

采集频率、检测阈值、环境参数

100Hz0.1μm37℃CO? 5%

检测平滑肌细胞可适当提高检测阈值至0.15μm

CardioExcyte 96

场电位增益、搏动采集频率、培养环境

1000×100Hz37℃CO? 5%

根据细胞密度调整场电位增益,避免信号饱和

四、数据处理步骤

4.1原始数据预处理

1.数据筛选:打开对应仪器配套分析软件(如Data Control 384、DataControl 96),导入原始数据,根据QC标准筛选有效数据(如SyncroPatch 384排除封接电阻<1GΩ的孔;FLEXcyte 96排除收缩频率变异系数>15%的孔)。
2.基线校正与降噪:对筛选后的电生理数据进行基线校正,去除基线漂移;对力学数据采用自适应滤波算法去除背景噪音,确保信号清晰。
3.参数提取:① 电生理参数:离子通道峰电流幅值、电流密度、激活/失活时间常数、动作电位时程(APD);② 力学参数:收缩/搏动频率、收缩幅度、峰值力、收缩期上升时间、舒张期下降时间。

4.2联用数据整合

1.时序匹配:以时间为横轴,利用软件时序匹配功能,将同一实验条件下的电生理数据与力学数据对齐,确保时间戳一致。
2.数据集构建:将匹配后的参数导入Excel或GraphPad Prism软件,建立整合数据集,包含“实验分组、药物浓度、电生理参数、力学参数、重复次数”等关键信息。

4.3统计分析与可视化

1.统计检验:每组设置3-6个复孔,数据以“均值±标准差(Mean±SD)”表示;采用GraphPad Prism 9.0进行统计分析,组间比较用单因素方差分析(ANOVA),P<0.05为差异有统计学意义。
2.结果可视化:① 绘制浓度-效应曲线(如药物浓度与收缩幅度、峰电流幅值的量效关系曲线);② 绘制时序关联图(如同一细胞药物刺激后离子电流与收缩力的动态变化曲线);③ 用热图展示96孔/384孔板数据分布,直观呈现数据重复性。

4.4数据导出与报告生成

导出分析后的原始数据、统计结果及图表,生成标准化实验报告,包含实验目的、仪器参数、实验流程、数据结果、结论与讨论等模块,可导出为Word或PDF格式存档。

五、注意事项

  • 细胞质量控制:接种前需确保细胞活力≥90%,避免死细胞过多影响信号检测;心肌细胞需培养至形成同步收缩网络后再启动实验,未成熟细胞会导致力学信号不稳定。
  • 仪器与环境稳定性:实验全程保持温度、CO?浓度稳定,避免环境波动导致数据偏差;多仪器联用时需实时监控时序同步性,每批实验前重新校准确认。
  • 耗材使用规范:专用芯片、PDMS膜板等为一次性耗材,禁止重复使用;包被后的耗材需在24h内使用,避免包被液失效影响细胞黏附。
  • 药物与缓冲液管理:药物稀释需精准计量,做好浓度标记;缓冲液pH需严格控制在7.35-7.45,使用前需恢复至37℃,避免温度、pH变化影响细胞活性与信号检测。
  • 数据质控与追溯:实验过程中实时监控数据质量,对异常数据(如电流骤降、收缩信号消失)及时标记并记录原因(如细胞死亡、液路堵塞);原始数据与分析结果需规范命名,确保可追溯。
  • 仪器维护:实验结束后需用超纯水或专用清洗液冲洗仪器液路,清理检测模块;定期对仪器进行校准与维护,延长设备使用寿命。

六、实验优化方向

  • 细胞类型适配优化:针对不同细胞类型调整耗材包被浓度(如平滑肌细胞纤连蛋白包被浓度可提高至15μg/ml)、仪器参数(如SyncroPatch 384刺激电压范围),适配细胞特异性力学与电生理特性。
  • 长期实验方案优化:若开展慢性药物暴露实验,可将培养板长期置于仪器培养模块,每24h更换含药物的培养液,同步采集数据,持续3-7天,探究长期干预的力学-电生理变化规律。
  • 多模态联用拓展:结合光遗传刺激模块(如FLEXcyte SOL),实现“光刺激-电生理-力学信号”三联同步记录;或联用AtlaZ无标记活细胞分析系统,补充细胞形态、迁移等力学表型数据。
  • 类器官实验适配:针对心肌、神经类器官,优化3D培养方案与耗材适配性,调整仪器检测参数(如提高光学模块穿透深度),实现类器官力学-功能关联检测。

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