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谁在耐药?从环境到临床,单细胞拉曼如何重构耐药性研究的证据链?

来源:长春长光辰英生物科学仪器有限公司 更新时间:2025-12-31 08:15:22 阅读量:36
导读:耐药性研究正在从“耐药基因清单”走向“单细胞表型—基因型—生态过程”的综合解析。依托?P300? PRECI SCS /R300?的组合能力,研究者可实现:单细胞表型读出、耐药亚群识别、目标细胞分选与下游多组学验证。

导语:

从“基因耐药”走向“表型耐药”的单细胞解析

抗生素的广泛使用使耐药菌(ARB)与耐药基因(ARG)的环境传播与临床风险持续上升。宏基因组学仅能够揭示群体中“有哪些耐药基因”,却很难回答“哪些细胞正在耐药、在什么压力条件下仍保持代谢活性”。

单细胞拉曼表型分析(结合重水同位素标记)提供了一条更直接的路径:在不依赖培养或不依赖标签的前提下,于单细胞尺度快速读取代谢活性与耐药表型,并可进一步与分选、测序联动,建立“表型—基因型”对应关系。


耐药性表型检测的核心思路:重水(D2O抗生素的 Raman-DIP 流程

在耐药性研究中,常见难点是:同一样本内细胞状态高度异质,且“存活/代谢活跃”与“携带耐药基因”并不总是一回事。

基于稳定同位素的拉曼同位素探针可以把“代谢活性”转化为可被拉曼光谱读取的表型信号:细胞在含 D2条件下发生同位素掺入,形成可量化的光谱差异,用于表征代谢活跃程度,并在抗生素压力下比较其变化趋势。

稳定同位素-拉曼技术实验流程图


支撑“耐药菌拉曼检测”全流程的2大核心平台



 P300共聚焦拉曼光谱仪

面向单细胞与微区样本的稳定拉曼采集与分析,内置多维校正装置,对峰位/峰强/背景等进行多维度校正,提升跨批次、跨时间测试的一致性与可比性,并支持与软件分析流程联动。



PRECI SCS 可视化单细胞分选仪 / PRECI SCS-R300 拉曼单细胞分选仪

基于LIFT(激光诱导向前转移)实现非接触式单细胞分选,并可在成像与拉曼光谱表型判据指导下完成“所见即分、分后可测序/可培养”的闭环。


耐药菌研究典型应用案例

《PNAS》丨单细胞拉曼结合靶向宏基因组揭示土壤活性抗生素耐药组

《Frontiers in Microbiology》 | 利用重水标记-拉曼光谱技术快速测定伊莎白属植物抗菌素敏感性


《Environmental Microbiology》期刊文章 | HOOKE单细胞分选仪助力肠道耐药菌表型与基因型的关联研究


《Analytical Chemistry》 | HOOKE单细胞分选仪助力耐药基因水平基因转移研究


为什么是 P300 & PRECI SCSR300)把“表型证据”变成“可验证样本”

耐药性研究众,研究者真正需要的往往不是一条“看起来像”的谱,而是能在不同批次、不同时间、不同操作者之间复现的表型指标,并能把这些指标落到可测序、可培养、可回溯的单细胞样本上。



  • P300:稳定、可比的拉曼表型读出

通过内置多维校正装置对峰位/峰强/背景等进行多维度校正,提升光谱数据重现性,为耐药性这种“跨组对比、跨条件统计”的研究提供更可靠的数据基础。 

  • PRECI SCS / R300:表型驱动的单细胞精准分选

基于 LIFT 的非接触式分选方式,使研究者能够在显微/拉曼表型判据指导下选取目标细胞,并将其直接对接到扩增、测序或培养验证环节,形成“测得出—分得到—证得了”的闭环。


让耐药研究从“群体平均”走向“单细胞可追溯”


耐药性研究正在从“耐药基因清单”走向“单细胞表型—基因型—生态过程”的综合解析。基于重水标记的单细胞拉曼表型分析,为不同体系(环境/肠道/病原菌/传播过程)提供了可量化、可分选、可验证的证据链。

依托 P300 共聚焦拉曼光谱仪 或 PRECI SCS /R300 拉曼单细胞可视化分选仪检测与分选的组合能力,研究者可以在同一研究框架内实现:单细胞表型读出、耐药亚群识别、目标细胞分选与下游多组学验证,从而更高效地回答“谁在耐药、为何耐药、耐药如何扩散”等关键问题。

参考文献:

[1] Li, Hong-Zhe, et al. "Active antibiotic resistome in soils unraveled by single-cell isotope probing and targeted metagenomics." Proceedings of the National Academy of Sciences 119.40 (2022): e2201473119.

[2] Yuan, Shuying, et al. "Single Cell Raman Spectroscopy Deuterium Isotope Probing for Rapid Antimicrobial Susceptibility Test of Elizabethkingia spp." Frontiers in Microbiology 13 (2022): 876925.

[3] Wang, Yi, et al. "Ramanactivated sorting of antibioticresistant bacteria in human gut microbiota." Environmental Microbiology 22.7 (2020): 2613-2624.

[4] Li, Hong-Zhe, et al. "Phenotypic tracking of antibiotic resistance spread via transformation from environment to clinic by reverse D2O single-cell Raman probing." Analytical Chemistry 92.23 (2020): 15472-15479.


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