普通车床正确启动的详细步骤及注意事项

　　细胞培养的步骤及注意事项

　　一、 复苏

　　1. 把冻存管从液氮中取出来，立即投入37℃水浴锅中，轻微摇动。液体都融化后(大概1-1.5分钟)，拿出来喷点酒精放到超净工作台里。

　　2. 把上述细胞悬液吸到装10ml培养基的15ml的离心管中(用培养基把冻存管洗一遍，把粘在壁上的细胞都洗下来)，1000转离心5分钟。

　　3. 把上清液倒掉，加1ml培养基把细胞悬浮起来。吸到装有10ml培养基的10cm培养皿中前后左右轻轻摇动，使培养皿中的细胞均匀分布。

　　4. 标好细胞种类和日期、培养人名字等，放到CO2培养箱中培养，细胞贴壁后换培养基。

　　5. 3天换一次培养基。

　　二、 传代

　　1. 培养皿中的细胞覆盖率达到80%-90%时要传代。

　　2. 把原有培养基吸掉。

　　3. 加适当的胰蛋白酶(能覆盖细胞就行)，消化1-2分钟。

　　4. 细胞都变圆后加如入等体积的含血清的培养基终止消化。

　　5. 用移液枪吹打细胞，把细胞都悬浮起来。

　　6. 把细胞吸到15ml的离心管中，1000转离心5分钟。

　　7. 倒掉上清液，加1-2ml培养基，把细胞都吹起来。

　　8. 根据细胞种类把细胞传到几个培养皿中。一般，癌细胞分5个，正常细胞传3个。继续培养。

　　三、 冻存把细胞消化下来并离心(同上)。用配好的冻存液把细胞悬浮起来，分装到灭菌的冻存管中，静止几分钟，写明细胞种类，冻存日期。4℃ 30min，-20℃ 30min，-80℃过夜，然后放到液氮灌中保存。 冻存液的配制： 70%的完全培养基+20%FBS+10%DMSO. DMSO要慢慢滴加，边滴边摇。

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氮吹仪的正确使用方法及注意事项
氮吹仪采用惰性气体对加热样液进行吹扫，使被处理样品迅速浓缩，达到快速分离纯化的效果。该方法操作简便，尤其可以同时处理多个样品，大大缩短了检测时间。氨吹仪被广泛应用于农残检测、制药行业和通用研究中的样品批量处理。氮气是一种不易同其他物质反应的气体，用氮气吹干可以避免气体同水中融解的其他物质产生化学反应而生成沉淀。用氮气吹干是增加了气体流动带走了挥发的水，从而使样品迅速浓缩，达到快速分离纯化的效果。该方法操作简便，尤其可以同时处理多个样品，大大缩短了检测时间。氮吹仪被广泛应用于农残检测、制药行业和通用研究中的样品批量处理。
圆形水浴氮吹仪包括主机，样品支架和气体分配系统。试管通过带弹簧的试管夹和支撑盘来固定位置。每个样品位置都加以编号。气体进入气体分配歧管，灵活的导气管将气体导入每个位置的阀－导气管接口处。根据试管大小和溶剂多少，各导气管可独立升降至所需高度。
不锈钢通气针将气体吹至溶液表面，从而使溶剂迅速挥发。圆形不锈钢水浴提供温和加热，在室温＋5~99℃的温度范围内可准确保持恒定水温。
氮吹仪应该如何正确使用呢，下面来给大家讲解一下：
1.氮吹仪安装好后，底盘支撑在恒温水浴内，打开水浴电源，设定水浴温度，水浴开始加热。
2.提升氮吹仪，将需要蒸发浓缩的样品分别安放在样品定位架上，并由托盘托起，其中托盘和定位架高低可根据培训样品试管的大小调整
3.打开流量计针阀，氮气经流量计和输气管到达配气盘，配气后送往各样品位上方的针阀管（安装在配气盘上）。
4.然后，通过调节流量阀，氮气经针管和针头吹向液体样品试管，可通过调整锁紧螺母可以上下滑动针管，调整针头高度，以样品表面
吹起波纹，样品又不溅起为好。
5.后，将氮吹仪放于水浴中，直到蒸发浓缩完成。
6.关闭气源，调节阀，流量计针阀
7.关闭电源
8.用溶剂冲洗针头
注意事项：
1.不能用燃点低于99℃度的试剂
2.整个操作在通风厨内进行
3.注意个人的安全防护
4.加热过程中请勿移动机器

　　移液管的使用步骤：

　　1、使用时应先将移液管洗净，自然沥干。

　　2、用待量取的溶液润洗2-3次，用右手拇指及中指捏住管颈标线以上的地方。

　　3、左手拿像皮球轻轻将溶液吸上，眼睛注意上升的液面。

　　4、当液面上升到标线约1cm以上时，迅速用右手食指堵住管口。

　　5、取出移液管，用滤纸拭干移液管下端及外壁。

　　6、稍稍松开右手食指，使液面缓缓下降，至凹液面与标线相切。

　　7、再将移液管移入准备接受溶液的容器中，使其出口接触器壁。

　　8、容器稍微倾斜，移液管直立，使溶液自由的顺壁流下。

　　9、此时移液管仍残留有一滴液体，不可吹出。

　　移液管的注意事项：

　　1、移液管(吸量管)不应在烘箱中烘干。

　　2、移液管(吸量管)不能移取太热或太冷的溶液。

　　3、同一实验中应尽可能使用同一支移液管。

　　4、移液管在使用完毕后，应立即用自来水及蒸馏水冲洗干净，置于移液管架上。

　　5、移液管和容量瓶常配合使用，因此在使用前常作两者的相对体积校准。

　　6、在使用吸量管时，为了减少测量误差，每次都应从最上面刻度(0刻度)处为起始点，往下放出所需体积的溶液，而不是需要多少体积就吸取多少体积。

　　7、移液管有老式和新式，老式管身标有“吹”字样，需要用洗耳球吹出管口残余液体。新式的没有，千万不要吹出管口残余，否则引起量取液体过多。

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　　移液管润洗的步骤及注意事项？

　　移液润洗步骤

　　1、先用自来水淋洗后，用铬酸洗涤液浸泡，操作方法如下：

　　(1)用右手拿移液管上端合适位置，食指靠近管上口，中指和无名指张开握住移液管外侧，拇指在中指和无名指中间位置握在移液管内侧，小指自然放松;

　　(2)左手拿洗耳球，尖口向下，排出球内空气，将吸耳球尖口插入或紧接在移液管上口，注意不能漏气。慢慢松开左手手指，将洗涤液慢慢吸入管内，直至刻度线以上部分，移开吸耳球，迅速用右手食指堵住移液管上口，等待片刻后，将洗涤液放回原瓶;

　　(3)用自来水冲洗移液管内、外壁至不挂水珠，再用蒸馏水洗涤3次，控干水备用。

　　2、待取溶液润洗：

　　(1)摇匀待吸溶液，将待吸溶液倒于一洗净干燥的小烧杯中，将清洗过的移液管JD内外的水分吸干;

　　(2)插入小烧杯中吸取溶液，当吸至移液管容量的1/3时， 立即用食指按住管口，取出，横持并转动移液管，使溶液流遍全管内壁，后将溶液从下端尖口处排入废液杯内;

　　(3)如此操作，润洗了3-4次后即可吸取溶液。
 

　　注意事项：

　　1、移液管不可在烘箱中烘干。

　　2、移液管和容量瓶常配合使用，因此在使用前常作两者的相对体积校准。

　　3、在使用吸量管时，为了减少测量误差，每次都应从最上面刻度(0刻度)处为起始点，往下放出所需体积的溶液，而不是需要多少体积就吸取多少体积。

　　4、需注意移液管管身是否标有“吹”字样，若有，则需要用洗耳球吹出管口残余液体。若没有，千万不要吹出管口残余，否则引起量取液体过多。

　　5、移液管不能移取太热或太冷的溶液。

　　扩展资料：

　　移液管调节液面操作方法：

　　1、取一干净小烧杯，将移液管管尖紧靠小烧杯内壁，小烧杯保持倾斜，使移液管保持垂直，刻度线和视线保持水平。

　　2、稍稍松开食指，使管内溶液慢慢从下口流出，液面将至刻度线时，按紧食指，停顿片刻，再按上法将溶液的凹液面ZD端放至与标线上缘相切为止，立即用食指压紧管口。

　　3、将尖口处紧靠烧杯内壁，向烧杯口移动少许，去掉尖口处的液滴。将移液管小心移至承接溶液的容器中。
 

　　移液管润洗的步骤及注意事项，本生生物小编就分享到这了，看完本文您就应该有了基本的认识和了解相信大家都明白了吧!总的来说，希望对大家有所帮助。

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　　细胞培养的步骤和注意事项您需知

　　一、 复苏

　　1. 把冻存管从液氮中取出来，立即投入37℃水浴锅中，轻微摇动。液体都融化后(大概1-1.5分钟)，拿出来喷点酒精放到超净工作台里。

　　2. 把上述细胞悬液吸到装10ml培养基的15ml的离心管中(用培养基把冻存管洗一遍，把粘在壁上的细胞都洗下来)，1000转离心5分钟。

　　3. 把上清液倒掉，加1ml培养基把细胞悬浮起来。吸到装有10ml培养基的10cm培养皿中前后左右轻轻摇动，使培养皿中的细胞均匀分布。

　　4. 标好细胞种类和日期、培养人名字等，放到CO2培养箱中培养，细胞贴壁后换培养基。

　　5. 3天换一次培养基。

　　二、 传代

　　1. 培养皿中的细胞覆盖率达到80%-90%时要传代。

　　2. 把原有培养基吸掉。

　　3. 加适当的胰蛋白酶(能覆盖细胞就行)，消化1-2分钟。

　　4. 细胞都变圆后加如入等体积的含血清的培养基终止消化。

　　5. 用移液枪吹打细胞，把细胞都悬浮起来。

　　6. 把细胞吸到15ml的离心管中，1000转离心5分钟。

　　7. 倒掉上清液，加1-2ml培养基，把细胞都吹起来。

　　8. 根据细胞种类把细胞传到几个培养皿中。一般，癌细胞分5个，正常细胞传3个。继续培养。

　　三、 冻存

　　把细胞消化下来并离心(同上)。用配好的冻存液把细胞悬浮起来，分装到灭菌的冻存管中，静止几分钟，写明细胞种类，冻存日期。4℃ 30min，-20℃ 30min，-80℃过夜，然后放到液氮灌中保存。

　　冻存液的配制： 70%的完全培养基+20%FBS+10%DMSO. DMSO要慢慢滴加，边滴边摇。

　　细胞培养的步骤和注意事项 先和大家介绍到这，如果想要了解更多细胞培养的信息，可以关注天津本生生物，专业给生物行业客户提供生物实验室检测耗材，欢迎广大客户来询。