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如何制备密度梯度离心液?

胡*乐布和 2013-11-26 23:38:59 269  浏览
  •  

参与评论

全部评论(1条)

  • 哪银哦你 2013-11-27 00:00:00
    密度梯度离心方法是分离生物小分子常用的方法,广泛用于病毒的分离纯化、亚细胞器、蛋白质、质粒DNA、RNA等的分离,其Z显著的特点是获得样品的纯度高。 制备密度梯度离心液是密度梯度离心分离的前提条件。

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  实验地点:上海**大学医学院东区单细胞中心

  

  实验仪器:单细胞悬液制备仪(温控型)JX-CKSM-6WK

  样品前处理制备实验步骤:

  

  1、打开仪器电源开关,将仪器界面中的加热点开预热一段时间持恒温。

  

  2、将组织稍微剪切成小块,放入净信2ml研磨管中。

  

  3、加入净信消化酶旋上盖子,上下微微晃动将其组织和消化酶均匀混合。

  

  4、将混合好的研磨管放入加热模块中,再将研磨管放入热板中,盖上盖子。

  

  5、启动设备,待设备停止运行后打开仪器盖子,取出样品管

  

  6、将样品管中的液体和剩下的组织一起倒入过滤管中,再加入终止液后得到浑浊的液体,即单细胞悬液。

  

  样品处理前后效果图:

  显微镜下的细胞呈现:

  实验样品组织制备注意事项:

  

  1、消化酶和终止液均需要在冷冻环境下保存

  

  2、消化酶解冻时需在常温条件下解冻,不可以放入水浴或者其他加热仪器中解冻,温度升高对酶的活性会有很大的影响。

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实验仪器:单细胞悬液制备仪,研磨套装管,滤管,移液枪,培养皿,镊子,手术刀

实验试剂:PBS液,净信消化酶,终止液

操作步骤:

1、开机预热,打开加热模块1,加热模块2

2、取活体组织后,放入PBS液中去红,然后取20-50mg(约小米粒大小),再分成若干等分

3、把消化酶用移液器加入研磨套装管中,将加满消化酶的离心管放入预热模块中预热几分钟

4、将处理好的组织用镊子转移到加满消化酶的离心管中

5、将装满消化酶和组织的离心管放置到加热板中,选择25分钟程序,开始运行

6、程序结束取出离心管,将消化好的组织液转移到过滤管中,即得到一管单细胞悬液

仪器介绍:

上海净信单细胞制备仪JX-CKSM-6WK(6通道加热型)是一种集成金属浴消化与温和剪切组织的新一代细胞悬液制备设备,应用于流式细胞术/单细胞测序/原代细胞培养等实验,具有起始组织量小,时间短,细胞得率高,细胞活性高的特点。采用国际DIN方法设计,低噪音,使用方便,性能稳定。

应用领域:肿瘤研究 心血管研究 干细胞研究 免疫研究 神经科学研究

产品应用:

单细胞测序(Single-Cell RNASeq)

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然而神经细胞的分离制备难度较大,相较于新生鼠,成年鼠脑的解离更复杂,需要机械和酶解联合作用来降解细胞外基质,同时大量的髓鞘碎片和红细胞也会干扰下游实验。

那么,如何快速制备高质量的大/小鼠神经细胞悬液样本呢?接下来,我们从实验仪器及材料、实验步骤和实验结果一一介绍,希望对你的实验有所帮助。


实验仪器及材料

瑞沃德 DSC-400单细胞悬液制备仪;

瑞沃德 HJ-400 加热套;

瑞沃德 DHABE-5003大小鼠成年脑组织温和酶解试剂盒;

瑞沃德 SCT-100组织处理管;

70μm 细胞滤器;

瑞沃德眼科手术器械;

细胞培养耗材、移液枪等。


实验步骤

1、按照说明书要求,混合配置酶mix并37℃水浴激活。

2、剥离成年鼠(P>7)脑组织,暂存至盛有HBSS(含Ca2+和Mg2+)的培养皿中,用眼科镊轻轻地将脑组织的血管尽可能去除。

尽可能剔除脑组织上的血管

3、将脑组织和酶mix放于组织处理管中,用剪刀将全脑简单剪成4块。

4、将组织处理管倒置至单细胞悬液制备仪上,安装加热套,运行程序 M_ABrain_Heater_2。

5、润湿细胞滤器,过滤细胞悬液样本,300×g ,离心10 min。

使用细胞筛过滤杂质

6、转移细胞样本至15mL离心管,加入去碎片试剂后混匀,上层铺预冷的PBS,3000×g, 4℃,升速为5,降速为3,离心10min,保留下层细胞后洗涤收集。

去除碎片,收集下层细胞

7、裂红操作(可选)。

8、细胞计数及流式检测。


实验结果


使用瑞沃德单细胞悬液制备仪处理成年小鼠脑组织获得的细胞可达90%,细胞活性高,不影响下游实验。瑞沃德 DHABE-5003大小鼠成年脑组织温和酶解试剂盒,可用于成年大鼠或小鼠(P>7)全脑组织的单细胞悬液制备,可支持脑内所有神经及非神经细胞的分离。


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