一株野生刺梨来源葡萄汁有孢汉逊酵母的鉴定及酿造学性能分析

本文由 北京盈盛恒泰科技有限责任公司 整理汇编

2025-01-06 15:34 143阅读次数

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• 一株野生刺梨来源葡萄汁有孢汉逊酵母的鉴定及酿造学性能分析

  摘要：为鉴定一株野生刺梨来源产香酵母WR-27的种属类别与酿造学性能，采用形态学结合分子生物学技术解析其种属类别，分光光度法检测菌株的生长特性、酿造环境耐受性，显色法分析其产硫化氢和β-葡萄糖苷酶性能[详细]

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  摘要：为解决传统酿造酵母在高单宁水果发酵中存在品质不佳的问题，筛选适合发酵的优良酵母。该研究在单宁胁迫条件下，从刺梨等水果中筛选鉴定出1株具有高单宁耐受性的贝氏酵母菌株N1(Saccharomyces bayanus)，分析其发酵能力与风味组成。结果表明，菌株N1Z适生长温度28 ℃，Z适pH=6，能够耐受32 g/L单宁、400 g/L糖度、16%乙醇、250 mg/L SO2，单宁降解率为40.01%；将菌株N1用于刺梨果渣发酵，获得的刺梨酒酒精度9.23%vol，总酯1.36 g/L，残糖4.31 g/L；电子鼻主成分分析模型(principal component analysis， PCA)中N1与酿酒酵母SY在第二主成分呈负相关；W1S、W1C、W3C传感器敏感度Z高，表明烷烃类、芳香苯类、芳香胺类在风味中贡献较大，是刺梨酒的主要风味成分。该研究为高单宁水果发酵提供了一定参考价值。 关键词：单宁耐受性;筛选;贝氏酵母;发酵特性;电子鼻; [详细]

  2023-05-15 11:11

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  “僵尸肉"到底从哪儿来？成都华衡仪器有限公司食品安全检测仪之病害肉速测仪作者：成都华衡仪器有限公司畜牧部田经理参考文献：新闻网今年6月，海关总署在国内14个省份统一组织开展打击冻品走私专项查缉抓捕行动。行动的成果让人震惊，“70后"猪蹄、“80后"鸡翅……比一些年轻人年纪还大的“僵尸肉"通过走私途径，悄无声息地出现在百姓餐桌上。虽然海关总署并未公开这些“僵尸肉"的来源，但既然是走私入境，那就是来源于境外。新华国际客户端就来追踪一下“僵尸肉"在国际上的诡秘行踪。来源【战备肉】在历史上，“僵尸肉"**次作为丑闻主角出现，是在1898年的美西战争期间。当时，美国战争部以极低价格从芝加哥等地的肉制品企业采购战备肉。由于时间紧、任务重、价格低，为赚取利润，黑心企业将质量极低的牛肉运往当时作为双方战场的古巴。在战场上，这些战备肉由于腐败变质或使用了过量的化学用品，导致大量士兵患上痢疾和食品中毒。再加上当时军营里疟疾和黄热病横行，这些“僵尸肉"让当时的美军遭到严重打击，Z终患病死亡的美军人数是战死的两倍之多。这一事件被称为“美军牛肉丑闻"，引发国会调查，但Z终不了了之。不过它揭露的食品工业乱象却引起了社会广泛关注。Z终在1906年，美国国会通过了《肉类卫生检查法案》和《纯净食品药品法案》。但“僵尸肉"的幽灵并未从战备肉这一类属当中彻底淡出。2010年1月，俄罗斯内务部经济安全局在俄西南部的别尔哥罗德州破获一起肉制品走私案。调查人员发现，一些年龄超过30年的冷冻“战备肉"从美国、巴西、比利时、加拿大和阿根廷经乌克兰境内走私进入俄境。涉案的犯罪团伙当时从事这种勾当已有数年时间。警方在侦查过程中发现，这些肉制品曾被作为“战略储备物质"长年保存在拉美某国的冷库里，已经严重过期。据侦查人员提供的资料表明，这些肉制品是在上世纪的一九七四年被冷冻起来的。来源【黑心肉】“僵尸肉"的来源除了因战略储备而严重过期外，还有一些商家昧着良心将过期的肉制品卖给消费者。近现代Z的案例出现在德国。2006年，一家位于德国巴伐利亚州与奥地利边境地区的公司使用伪造保质时间标签，将过期肉制品解冻、腌制，然后再次冷冻出售，警方查封了该公司约120吨腐烂肉制品，有些甚至已经过了保质期4年之久。这些肉制品解冻后模样惊人，除了呈诡异的青绿色外，还有发霉腐败迹象。类似案件此后继续在德国出现。2007年。德国再次出现一起全国范围的“黑心肉"丑闻，大约150吨腐烂过期的肉类由巴伐利亚州送入首都柏林一家生产土耳其烤肉的公司，经加工后分销到各地，Z终出现在8个州的快餐摊点，有些甚至出口到国外。除此之外，2007年2月，德国警方又在南部城市伊勒蒂森的一家冷冻厂发现数吨过期肉制品，它们来自意大利，准备运往法国和俄罗斯。德国媒体认为，此类事件频发除了与德国食品检疫等执法并不由ZY办、而是属于地方政府职责外，还与德国人节俭、爱买便宜货的习惯有关。除了德国，美国、瑞典也发生过类似事件。来源【蚂蚁搬家肉】当在发达国家面对越来越严的监管和审查之时，僵尸肉把目光瞄准了发展ZG家，近年来肉制品消费量显著增加的ZG首当其冲。在6月份的冻品走私专项查缉抓捕行动中，据相关人员介绍，Z常见的走私路径是：走私人员从境外以低价采购货品，用集装箱发至香港，然后发往越南海防，在中越边境的芒街拆解，雇佣边民“蚂蚁搬家式"将冻品运到境内。一个35吨的集装箱冻品由几十个边民搬运，一两个小时就能搬完。这一走私途径和“蚂蚁搬家"的走私方式其实早就存在。新闻报道显示，早在2004年，广东等地的冻品走私活动就呈现上升趋势。当时，由于国家有关部门陆续决定暂停多个疫情发生国禽畜产品的进口，导致大量此类产品积压香港。随着夏季来临，香港冷冻租金日高，于是货主们就不惜低价抛售寻找出路。加之广东一带鸡爪、鸡翼消费量较大，限制进口让此类产品市场价陡升，一些不法分子在利益的驱使下，从香港经海上走私冻品至广东等地分销，引发鸡爪等冻品“走私潮"。而在2012年，广西南宁市集中深埋销毁250多吨走私冻品，相关负责人介绍，这些冻品来自美国、越南、巴西等国家，并从越南走私入境，走私分子以南宁作为中转站，将这些冻品销往我国部分省区。（记者王丰丰，编辑杜白羽，新华国际客户端报道）成都华衡仪器有限公司食品安全检测仪之病害肉速测仪病害肉速测仪产品概述病害肉速测仪适用于各类畜禽肉制品中病死猪肉、新鲜度等理化指标的快速测定。该科研项目由福建省科技厅资助，已获得国家发明ZL保护，并于2006年通过了福建省科技厅、福建省质量技术监督局、厦门出入境检验检疫局等单位的成果鉴定。病害肉速测仪应用领域适用于畜牧业监管部门、动物卫生监督部门、屠宰场以及相关流通企业对肉类质量安全监控病害肉速测仪检测项目标配：病害肉特征物、挥发性盐基氮、组胺；选配：亚硝酸盐、硼砂、吊白块等病害肉速测仪适用样品猪肉、牛肉、羊肉、鸡肉、鸭肉等各类肉及肉制品病害肉速测仪性能特点检测准确：采用ZL检测技术，检出限能够很好的满足国标《GB/T9959.2-2008》的要求，检测结果具有良好的准确度和重复性。检测快速：单项测定时间只需20-30分钟，即可得出定量结果，适用于现场快速监测工作。操作简单：中文提示操作，操作简便、易学易会、快速掌握，无需专业知识背景即可操作。适用广泛：检测对象涵盖急宰肉（病猪中、后期急宰），冷藏冷冻肉、病死猪肉等。现场操作：配置齐全、携带方便，无需复杂的前处理过程，检测人员在现场即可准确操作。联系人：张经理/田经理028-6600911718140123177感兴趣可来电，周末可来电18011534117咨询[详细]

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  LexA酵母双杂交系统简介一、LexA酵母双杂交系统的设计原理报告质粒p8op-LacZ的GAL4UAS编码序列被完全去除，因此在缺乏LexA融合激活剂的情况下，报告基因LacZ的转录活性为零，该基因的筛选标志为URA3，可以作为有自主复制能力的质粒存在于酵母EGY48菌株中，也可以被整合到EGY48基因组DNA上。质粒pLexA的筛选标志为HIS3，在双杂交系统中用于表达DNA-BD（202个氨基酸残基组成的LexA蛋白）与目标蛋白（钓饵，Bait）的融合蛋白，该融合体的表达受酵母强启动子ADH1的调控，选择与报告基因的操纵子LexA×8结合。质粒pB42AD的筛选标志为TRP1，在其供外源基因插入的多克隆位点（EcoRI与XhoI）上游，含有SV40核定位（SV40nuclearlocalization）、HA（血凝素）及AD（来自于E.coli的88个氨基酸残基组成的B42蛋白）等几种编码序列，共同组成可以启动报告基因转录表达的激活成份。在酵母EGY48的基因组中还整合有另一个报告基因Leu，它与LacZ报告基因具有相同的操纵子-LexA，但两者启动子不同。根据双杂交系统的原理，如果某一复合物同时具有DNA-BD和AD的活性，即可激活报告基因的转录和表达。分别将待测蛋白X、Y的编码序列插入pLexA质粒载体和pB42AD质粒载体的多克隆位点中，然后共同转入含有报告基因的酵母菌株，如果蛋白X与Y能相互作用，则启动报告基因的转录和表达，通过检测报告基因的表达情况，就可以间接反映蛋白X、Y是否具有相互作用以及作用的强弱。如果将蛋白Y换为取自组织或血液的cDNA文库，则可用X从该文库中筛选出能与其相互作用的蛋白，并且可以获得编码这些蛋白的cDNA。二、商品化酵母双杂交系统的组成1.载体质粒：pLexA、pB42AD、p8op-LacZ、pB42AD-DNA文库2.酵母菌株：EGY48、EGY48（p8op-LacZ）、YM4271（EGY48的伴侣菌株）3.大肠杆菌菌株：E.coliKC8株4.对照质粒：质粒用途pLexA-53，pB42AD-T阳性对照pLexA-Pos（LexA/GAL4AD融合蛋白〕阳性对照pLexA-Lam（LaminC蛋白少与其它蛋白相互作用）假阳性检测质粒5.引物：pLexA测序引物及pB42AD测序引物。三、酵母双杂交实验的基本流程1.将报告基因p8op-LacZ转化酵母EGY48菌株，用培养基SD/-Ura筛选。2.同时构建或扩增DNA文库，并纯化足够的质粒以转化酵母细胞。3.构建DNA-BD/靶蛋白质粒pLexA-X，作为钓饵（bait）。4.将上述钓饵质粒pLexA-X转化EGY48（p8op-LacZ）细胞株，用SD/-His/-Ura筛选;并用固体诱导培养基SD/Gal/Raf/-His/-Ura检测此DNA-BD/靶蛋白是否具有直接激活报告基因的活性，以及对酵母细胞是否具有杀伤毒性。转化质粒选择培养基克隆生长情况说明（含有Gal/Raf）pLexA-PosSD/-His，-Ura蓝阳性对照pLexASD/-His，-Ura白阴性对照PlexA-XSD/-His，-Ura白没有直接激活活性PlexA-XSD/-His，-Ura蓝具有直接激活活性PlexA-XSD/-His，-Ura菌落不能生长酵母细胞毒性4-1.如果pLexA-X-半乳糖苷酶的信号作用。b能够自动激活报告基因，则设法去除其激活活性部位、或者将LacZ报告基因整合入基因组，减少4-2.如果pLexA-X虽然不会自动激活报告基因，但对酵母宿主细胞有毒性，则需要与纯化的文库DNA同时转化酵母。5.如果pLexA-X既不会自动激活报告基因，也不具有毒性，则可以与纯化的文库DNA同时、或顺序转化酵母细胞，并检测质粒转化效率。转化质粒SD固体培养基LacZ表型对照1pLexA-PosGal/Raf/-His/-Ura蓝对照2pLexA-53Gal/Raf/-His/-Trp/-Ura/-Leu蓝+pB42AD-T实验pLexA-XGal/Raf/-His/-Trp/-Ura/-Leu待测+pB42AD-文库5-1.用SD/-His/-Trp/-Ura培养基选择阳性共转化子，并扩增，使宿主细胞中的质粒在诱导前达到Zda拷贝数。-半乳糖苷酶无表达。b5-2.上述重组子转至含X-gal的固体诱导培养基SD/Gal/Raf/-His/-Trp/-Ura/-Leu，观察LacZ及Leu报告基因的表达情形，蓝色克隆即为阳性。白色克隆为假阳性，说明Leu虽有表达，但5-3.同时用LacZ、Leu两个报告基因的目的，是为了尽可能消除实验的假阳性误差，譬如：AD融合蛋白不与目标蛋白结合，而直接与启动子序列结合域结合等情况。由于2个报告基因的启动子不同，出现上述假阳性的几率就大大减少了。5-4.将蓝色阳性克隆进行1次以上的划种，尽可能分离克隆中的多种文库质粒。6.阳性克隆的筛选6-1.随机选取50个阳性克隆，扩增、抽提酵母质粒，电转化E.coliKC8宿主菌，抽提大肠杆菌中的质粒，酶切鉴定是否具有插入片段及排除相同的文库质粒。6-2.如果重复的插入序列较多，可另取50个阳性克隆来分析。Z后得到数种片段大小不同的插入序列，再转化新的宿主细胞，检测是否仍为阳性克隆。7.用质粒自然分选法（NaturalSegregation）筛除只含有AD-文库杂合子的克隆7-1.将初步得到的阳性克隆接种SD/-Trp/-Ura液体培养基，培养1-2天，含有HIS3编码序列的BD-靶质粒在含有外源His培养基中，将以10%-20%左右的频率随机丢失。C孵育2-3天。°7-2.将上述克隆，转铺固体培养基SD/-Trp/-Ura，307-3.再挑取生长的单克隆，转入SD/-Trp/-Ura和SD/-His/-Trp/-Ura培养基中，筛选His表型缺陷的克隆，即得到只含有AD-文库杂合子的重组子。7-4.将His表型缺陷的克隆转化固体诱导培养基SD/Gal/Raf/-Trp/-Ura，以验证AD-文库能否直接激活报告基因的表达，弃去阳性克隆，保留阴性克隆。8.酵母杂合试验（YeastMating）确定真阳性克隆如下表所示，在酵母EGY48及其对应的YM4271宿主细胞中分别转入相应的质粒或文库DNA，通过杂合实验确筛选pLexA-靶DNA与pB42AD-文库确实具有相互作用的真阳性克隆。质粒1（inYM4271）质粒2（inEGY48）LacZ表型Leu表型pLexApB42AD白不能生长pLexA-靶DNApB42AD白不能生长pLexApB42AD-文库白不能生长pLexA-靶DNApB42AD-文库蓝真阳性pLexA-LampB42AD-文库白不能生长9.阳性克隆的进一步筛选和确证9-1.扩增初步确定的阳性克隆，抽提酵母DNA。该DNA为混合成份，既含有酵母基因组DNA，也含有3种转化的质粒DNA。9-2.将上述DNA电转化E.coliKC8宿主菌。由于在大肠杆菌中，具有不同复制起始调控序列的质粒不相容;同时利用营养缺陷型筛选。因此，在M9/SD/-Trp培养基上，只有含有AD-文库质粒的转化菌才能生长，将其扩增、并抽提质粒DNA，酶切鉴定。9-3.用pLexA-靶DNA与pB42AD-库DNA一一对应、共转化只含有报告基因的酵母菌EGY48中，先到SD/-His/-Trp/-Ura板扩增，并与后面的诱导板形成对照，说明报告基因的表达与诱导AD融合蛋白的表达有关，再确证LacZ、Leu报告基因的表达。9-4.扩增与靶DNA相互作用的文库DNA，进行序列分析及进一步的结构、功能研究。10.对双杂交系统阳性结果的进一步研究10-1.用不同的双杂交系统验证10-1-1.将载体pLexA与pB42AD互换后进行双杂交实验。10-1-2.选择不同的双杂交系统，如：以GAL4转录激活子为基础的双杂交系统。10-1-3.将文库质粒移码突变后，再与靶质粒作用，报告基因是否仍能被激活。-半乳糖苷酶水平，比较作用强度变化。b10-1-4.去除或突变特定结合位点，定量检测10-2.用试剂盒提供的引物测定插入片段的DNA序列，证明其编码区域。10-3.用其它的检测方法，如：亲和色谱法或免疫共沉淀法来证明双杂交系统筛选的蛋白之间的具有相互作用。10-4.进一步研究靶蛋白与筛选蛋白之间的功能关系构建于AD载体的cDNA文库的扩增1.自-80℃冰箱取出含有cDNA文库的甘油菌，置于冰浴中缓慢化冻。2.用新鲜的LB培养液在1.5ml离心管中将上述甘油菌1:106和1:108稀释。lml加入90m3.取稀释菌液各1090mm）;37℃倒置培养过夜或30℃培养24-36hr，计数平板上单克隆菌落数。fLB培养液在1.5ml离心管中振荡混匀，涂布LB/Amp平板（4.确定待扩增的cDNA文库滴度（cfu/ml）=克隆数×108（1:106稀释）或克隆数×1010（1:108稀释）。5.按照>150mm），共100块;37℃倒置培养过夜。f2-4×104cfu/平板的浓度，涂布LB/Amp平板（6.在超净工作台上，在所有生长菌落的平板上加适量LB培养液，将菌落刮下，转入2000mlLB/Amp培养液中，37℃振荡培养2-4hr。7.留取适量培养菌液以50%无菌甘油稀释至25%终浓度，分装，保存于-80℃。8.其余培养菌液离心8000xg×10min，4℃收集细菌;用质粒DNA纯化试剂盒大量抽提质粒DNA。LB液体培养基，121℃，15lb/in2灭菌15minA.bacto-Tryptone10.0gB.bacto-YeastExtract5.0gC.NaCl10.0gD.ddH2O→1000ml*LB固体培养平板为含有1.5%琼脂（Agar）LB培养基。**LB/Amp培养基为含有Ampg/ml的LB培养基。m50-100构建于AD载体的cDNA文库的纯化1.质粒DNA提取缓冲液名称缓冲液配方g/mlRNasemP1悬浮缓冲液50mMTris-HCl（pH8.0）;10mMEDTA;100AP2裂解缓冲液200mMNaOH;1%SDSP3中和缓冲液3.0MKac（pH5.5）QBT平衡缓冲液750mMNaCl;50mMMOPS（pH7.0）;15%异丙醇;0.15%TritonX-100QC洗涤缓冲液1.0MNaCl;50mMMOPS（pH7.0）;15%异丙醇QF洗脱缓冲液1.25MNaCl;50mMTris-HCl（pH8.5）;15%异丙醇2.培养菌液离心6000xg×10min，4℃，每500ml培养物（下同）的沉淀重悬于50mlP1缓冲液。3.加入50mlP2缓冲液，倒置4-6次混匀，室温孵育5min。4.加入4℃预冷的50mlP3缓冲液，快速倒置4-6次混匀，冰浴30min（其间再倒置混匀4-6次）。5.将上述混合液再倒置混匀，离心12000xg×30min，4℃，保留上清。6.上清再离心12000xg×15min，4℃，留上清。7.将上清液上样于经35mlQBT缓冲液平衡的QIAGEN-tip层析柱。8.以100mlQC缓冲液洗涤层析柱2次。9.以35mlQF缓冲液洗脱吸附于层析柱上的DNA。10.以0.7倍体积异丙醇沉淀DNA，离心12500xg×30min，4℃，小心去除上清。11.以7ml70%乙醇洗涤沉淀DNA，离心12500xg×10min，4℃，小心去除上清。12.将沉淀的质粒DNA溶于5mlTE（pH8.0）缓冲液，转移至新的无菌离心管中，用2.5倍体积无水乙醇;1/10体积3.0MNaAc（pH5.2），于-20℃静置过夜。13.离心12500xg×20min，4℃，去除上清，沉淀用70%乙醇洗涤，超净台风干。l），保存于-20℃。mg/管（用于1次转化反应，约40m14.干燥的DNA溶于适量体积TE，定量，分装100-200构建于DNA-BD载体的目的DNA转化酵母感受态细胞1.将酵母菌EGY48（p8op-lacZ）接种于5.0mlSD/-Ura液体培养基中，缓振打散菌落，然后转入95.0mlSD/-Ura液体培养基中，30℃恒温，250rpm振荡培养16-18hr，至OD600>1.0。SD/-Ura液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.DifcoNitrogen0.67gB.葡萄糖2.00gC.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）10.0mlD.20×His5.0mlE.20×Leu5.0mlF.20×Trp5.0mlG.ddH2O→100.0ml2.将上述新鲜培养菌液接种于300mlYPD，至OD600=0.2-0.3（约50ml），30℃恒温，250rpm振荡培养至OD600=0.4-0.5（约3hr）。YPD液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.Polypepton6.0gB.bacto-YeastExtract3.0gC.葡萄糖6.0gD.ddH2O→300ml3.室温离心5000xg×5min，弃上清;加入15-25mlddH2O重悬洗涤沉淀酵母细胞，离心弃上清，沉淀用1×TE/LiAc重悬后，即为酵母感受态细胞。4.准备下列试剂2×转化反应10×TE10×LiAc50%PEGddH2Olml/120ml15mA.1×TE/LiAc0.15ml15l/ml960ml120mB.PEG/LiAc1.20ml120lml//900mC.1×TE1.00ml1005.分装待转化的质粒DNA，振荡混匀。lmg）3-5mA.pLexA-X（0.1B.10mg/mllmSpermDNA*（0.1mg）10*新配制时水浴煮沸20min后，插入冰浴，保存于-20℃。l用1×TE/LiAc重悬的酵母感受态细胞，振荡混匀。m6.每管加入100lm7.各加入600PEG/LiAc，振荡混匀，30℃恒温，250rpm振荡培养30min。lm8.各加入70DMSO缓和倒置混匀。42℃热休克15min，迅速插入冰浴。9.室温离心13000xg×10sec，尽量弃上清;以0.3ml1×TE重悬沉淀细胞，涂布SD/-Ura，-His固体培养板，30℃倒置培养3-5天。SD/-Ura，-His固体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15min稍冷却后铺板A.DifcoNitrogen1.34gB.葡萄糖4.00gC.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）20.0mlD.20×Leu10.0mlE.20×Trp10.0mlF.Agar4.00gG.ddH2O90-100mm）f→200.0ml铺8-10块平板（附表1.不同规模转化酵母感受态细胞SmallScale*LargeScaleLibraryScale转化反应2011（1）SD液体培养基扩增酵母菌100ml100ml300ml（2）YPD液体培养基扩增酵母菌300mla300mla1000mla（3）TE或ddH2O洗涤酵母细胞15mlc25-50mlb500mla（4）准备A.1×TE/LiAc缓冲液1.5mld1.0mld8.0mlcB.PEG/LiAc缓冲液12.0mlc6.0mlc100.0mlbC.1×TE缓冲液6.0mlc10.0mlc10.0mlc（5）分装A.DNA-BDvectorgd×20/0.2-1.0mgcm0.1gd0.1-0.5mgmg×2010-50mB.ADvector0.1C.l2.0mlml×20200mSpermDNA（10mg/ml）101×TE/LiAc重悬感受态细胞1.5mlc1.0mlc8.0mlbl×201.0ml8.0mlm酵母感受态细胞100（7）PEG/LiAc缓冲液0.6ml×206.0ml60.0mll7.0mlml×20700mDMSO70（9）室温离心后弃上清13000xg×10sec2000xg×5min2000xg×5min（10）1×TE重悬感受态细胞0.3ml×206.0ml10.0ml150mm×50f150mm×30f90mm×20f铺固体选择培养基平板注:*即为“构建于DNA-BD载体的目的DNA转化酵母感受态细胞”**在不同容积的无菌离心管中进行，a:300或500ml;b:50ml;c:15ml;d:1.5ml文库cDNA转化含有DNA-BD载体的酵母感受态细胞1.以生长于SD/-Ura，-His固体培养板上的含有构建于DNA-BD载体的目的DNA及报告基因（p8op-lacZ）的酵母菌EGY48作为宿主菌，制备酵母感受态细胞。2.将酵母宿主菌接种于5.0mlSD/-Ura，-His液体培养基中，缓振打散菌落，然后转入95.0mlSD/-Ura，-His液体培养基中，30℃恒温，250rpm振荡培养16-18hr，至OD600>1.0。SD/-Ura，-His液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.DifcoNitrogen0.67gB.葡萄糖2.00gC.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）10.0mlD.20×Leu5.0mlE.20×Trp5.0mlF.ddH2O→100.0ml3.将上述新鲜培养菌液接种于300mlYPD，至OD600=0.2-0.3（约50ml），30℃恒温，250rpm振荡培养至OD600=0.4-0.5（约3hr）。YPD液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.Polypepton6.0gB.bacto-YeastExtract3.0gC.葡萄糖6.0gD.ddH2O→300ml4.室温离心5000xg×5min，弃上清;加入15-25mlddH2O重悬洗涤沉淀酵母细胞，离心弃上清，沉淀用1×TE/LiAc重悬后，即为酵母感受态细胞。5.准备下列试剂1×转化反应10×TE10×LiAc50%PEGddH2Olml/800ml100mA.1×TE/LiAc1.0ml100l4.8ml/ml600mB.PEG/LiAc6.0ml600C.1×TE10.0ml1.0ml//9.0ml6.取1.0ml用1×TE/LiAc重悬的酵母感受态细胞，加入下列成份，振荡混匀。lmg）40mA.pB42AD-Library（50-100B.10mg/mllmHerringDNA*（2.0mg）200*新配制时水浴煮沸20min后，插入冰浴，保存于-20℃。7.加入6.0mlPEG/LiAc，振荡混匀，30℃恒温，250rpm振荡培养30min。lm8.加入700DMSO缓和倒置混匀。42℃热休克15min，迅速插入冰浴。9.室温离心2000xg×5min，尽量弃上清。10.以6.0ml100mm，每稀释度各×2），30℃倒置培养3-5天，确定转化效率在2×106cfu以上有效。fl稀释不同倍数，涂布SD/-Ura，-His，-Trp固体培养板（m1×TE重悬沉淀细胞，取10150mm×30），30℃倒置培养3-5天。fl涂布SD/-Ura，-His，-Trp固体培养板（m11.按每板200SD/-Ura，-His，-Trp固体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15min稍冷却后铺板A.DifcoNitrogen13.40gB.葡萄糖40.00gC.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）200.0mlD.20×Leu100.0mlE.Agar40.00gF.ddH2O150mm）f→2000.0ml铺30块平板（12.在超净工作台上，在所有生长菌落的平板上各加5mlTE（pH7.0）缓冲液，将菌落刮下。13.离心弃上清，加入10-20mlTE缓冲液重悬沉淀菌，加入等体积的无菌65%甘油-MgSO4缓冲液，混匀，分装1.0ml/管，保存于4℃1周或-80℃1年以上。65%甘油-MgSO4缓冲液:65%甘油;100mMMgSO4;25mMTris-HCl（pH8.0）A.甘油65.00mlB.MgSO47H2O2.465gC.2.0MTris-HCl（pH8.0）1.25mlD.ddH2O→100.00ml酵母双杂合系统阳性克隆的筛选1.经过选择培养基筛选的含有DNA-BD载体、文库DNA及报告基因的酵母感受态细胞，用无菌TE稀释至1:104、1:106和1:108等不同浓度。90mm），30℃倒置培养3-5天，计数平板上单克隆菌落数。fl，涂布SD/-Ura，-His，-Trp固体培养板（m2.取上述稀释菌液各1003.确定待进一步鉴定的酵母菌滴度（cfu/ml）=克隆数×105（1:104稀释）、克隆数×107（1:106稀释）或克隆数×109（1:108稀释）。4.按照以前实验确定的文库转化效率的5-10倍的总量、0.5-2×106cfu/平板的菌量，涂布SD/Gal/Raf/-Ura，-His，-Trp，-Leu固体诱导培养板，30℃倒置培养3-5天。5.挑取显蓝色的菌落，再接种于SD/-Ura，-His，-Trp固体培养基以及SD/Gal/Raf/-Ura，-His，-Trp，-Leu固体诱导培养基，以进一步确证。SD/Gal/Raf/-Ura，-His，-Trp，-Leu固体诱导培养基A.SD/Gal/Raf3.79gB.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）10.0mlC.Agar2.00gD.ddH2O→85.0ml灭菌（115℃，10lb/in2）15min，冷却至50℃，加入下列成份后铺板E.10×BU10.0mlF.20mg/mlX-gal0.4ml90-100mm）f铺5-6块平板（10×BU缓冲液，121℃，15lb/in2灭菌15minA.Na2HPO412H2O9.30gB.NaH2PO42H2O3.90gC.ddH2O→100.0ml20mg/mlX-GalA.X-Gal40mgB.DMF2ml酵母双杂合系统阳性克隆的鉴定-酵母质粒DNA的提取1.挑取经过酵母选择/诱导培养基初步鉴定的酵母单菌落，接种于5.0-10.0mlSD/-Trp液体培养基，30℃恒温，250rpm振荡培养20hr。SD/-Trp液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.DifcoNitrogen0.67gB.葡萄糖2.00gC.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）10.0mlD.20×His5.0mlE.20×Leu5.0mlF.20×Ura5.0mlG.ddH2O→100.0ml2.室温离心5000xg×1min，弃上清，收菌。l酵母裂解液，振荡重悬沉淀酵母菌。m3.加入200酵母裂解液:2%TritonX-100;1%SDS;100mMNaCl;10mMTris-HCl（pH8.0）;1mMEDTAA.10%TritonX-10020.0mlB.10%SDS10.0mlC.NaCl0.58gD.Tris0.12gE.EDTANa22H2O0.04gF.1.0MHCl调pH8.0G.ddH2O→100.0ml4.加入下列试剂，充分振荡5min;液氮冻存10min，室温复融;再充分振荡5min。A.经酸处理的玻璃珠（Sigma）0.20gB.苯酚:氯仿:异戊醇（25:24:1）0.2ml5.室温离心12000xg×10min，将上清转移至新的1.5ml离心管中，加入下列试剂，于-70℃冻存30-60min。A.3MNaAc（1/10lmV）20lmB.无水乙醇（2.5V）5006.离心12500xg×10min，4℃，弃上清;70%乙醇洗涤沉淀，于37℃烘箱或超净台干燥DNA;将干燥的沉淀DNA重溶于l无菌ddH2O中，保存于-20℃。m20-30酵母双杂合系统阳性克隆的鉴定-酵母质粒DNA电转化大肠杆菌1.在冰浴条件下，取待转化DNAl感受态细胞中，混匀。mg），加入100ml（5pg-0.5m1.0WF，200m2.将上述混合液加入间距0.1cm的样品杯中，电转化（1.8kV，25。3.迅速加入1ml新鲜的LB培养液，混匀，转入1.5ml离心管中，37℃恒温，150rpm振荡孵育30-60min。4.将上述转化反应液涂布M9/DO（-Trp）固体培养板，37℃倒置培养至单菌落出现（16-22hr）。5.按常规方法扩增上述阳性转化菌，碱裂解法少量抽提质粒DNA，酶切筛选AD载体上含有插入片段的阳性克隆，保存其于25%甘油，待进一步验证。M9/DO-Trp固体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.葡萄糖1.2gB.Agar6.0gC.5×M9缓冲液60mlD.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）30mlE.20×His15mlF.20×Leu15mlG.20×Ura15mlH.ddH2O165ml冷却至50℃左右，加入下列成份，混匀铺板I.1.0MThiamine-HCl（Vit.B1）0.3mlJ.100mg/mlAmp0.3ml90-100mm）f铺10-15块平板（大肠杆菌感受态细胞的制备（电转化）1.挑取LB固体培养基上生长的E.coliKC8单菌落，接种于5mlLB液体培养基中，37℃恒温，250rpm振荡培养过夜（约12-14hr）。2.将2.5ml新鲜菌液接种于500mlSOB培养液中，37℃恒温，250rpm振荡培养至OD600=0.5-0.6（约2.5-3hr）。SOB液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.bacto-Tryptone10.00gB.bacto-YeastExtract2.50gC.NaCl0.25gD.KCl0.09gE.MgCl26H2O1.02gF.ddH2O→500.0ml3.将培养菌液收集于离心管中，冰水浴15-20min。4.离心6000xg×10min，4℃，弃尽上清;以5ml预冷的无菌ddH2O重悬沉淀菌;再加入500ml预冷的无菌ddH2O洗涤细菌。5.重复上述步骤1次，以充分去除培养基中残余的盐离子成份。6.用40-50ml预冷的无菌10%甘油重悬沉淀细菌，转移至50ml无菌离心管中;离心6000xg×10min，4℃，弃尽上清;重复此步骤1次。7.以等体积（约1.5-2.0ml）预冷的无菌10%甘油重悬上述沉淀的感受态细胞，分装0.5ml/管（5-6次转化反应），保存于-80℃备用。酵母双杂合系统阳性克隆的确证1.以含有报告基因（p8op-lacZ）的酵母菌EGY48作为转化宿主菌。2.将酵母宿主菌接种于5.0mlSD/-Ura液体培养基中，缓振打散菌落，然后转入95.0mlSD/-Ura液体培养基中，30℃恒温，250rpm振荡培养16-18hr，至OD600>1.0。SD/-Ura液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.DifcoNitrogen0.67gB.葡萄糖2.00gC.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）10.0mlD.20×His5.0mlE.20×Leu5.0mlF.20×Trp5.0mlG.ddH2O→100.0ml3.将上述新鲜培养菌液接种于300mlYPD，至OD600=0.2-0.3（约50ml），30℃恒温，250rpm振荡培养至OD600=0.4-0.5（约3hr）。YPD液体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15minA.Polypepton6.0gB.bacto-YeastExtract3.0gC.葡萄糖6.0gD.ddH2O→300ml4.室温离心5000xg×5min，弃上清;加入15-25mlddH2O重悬洗涤沉淀酵母细胞，离心弃上清，沉淀用1×TE/LiAc重悬后，即为酵母感受态细胞。5.准备下列试剂20×转化反应10×TE10×LiAc50%PEGddH2Ol/1.2mlml150mA.1×TE/LiAc1.5ml150B.PEG/LiAc12.0ml1.2ml1.2ml9.6ml/C.1×TE10.0ml1.0ml//9.0ml6.分装待转化的质粒DNA。A.pLexAlmg）3-5morpLexA-X（0.1lmg）3-5mB.pB42AD-Y（0.1C.10mg/mlSpermlmDNA*（0.1mg）10*新配制时水浴煮沸20min后，插入冰浴，保存于-20℃。l用1×TE/LiAc重悬的酵母感受态细胞，振荡混匀。m7.每管加入100lm8.各加入600PEG/LiAc，振荡混匀，30℃恒温，250rpm振荡培养30min。lm9.各加入70DMSO缓和倒置混匀。42℃热休克15min，迅速插入冰浴。10.室温离心13000xg×10sec，尽量弃上清;以0.3ml1×TE重悬沉淀细胞，涂布SD/-Ura，-His，-Trp固体培养板，30℃倒置培养3-5天。SD/-Ura，-His，-Trp固体培养基，115℃，10lb/in2灭菌15min稍冷却后铺板A.DifcoNitrogen3.35gB.葡萄糖10.00gC.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）50.0mlD.20×Leu25.0mlE.Agar10.00gF.ddH2O→500.0ml90-100mm）f铺20-25块平板（11.挑取上述固体培养基上生长的含有目的DNA（X）的pLexA-X（+）或空载pLexA（-）单菌落，分别接种SD/Gal/Raf/-Ura，-His，-Trp，-Leu固体诱导培养板，30℃倒置培养3-5天。SD/Gal/Raf/-Ura，-His，-Trp，-Leu固体诱导培养基A.SD/Gal/Raf3.79gB.10×DO（-His，-Leu，-Trp，-Ura）10.0mlC.Agar2.00gD.ddH2O→85.0ml灭菌（115℃，10lb/in2）15min，冷却至50℃，加入下列成份后铺板E.10×BU10.0mlF.20mg/mlX-gal0.4ml90-100mm）f铺5-6块平板（12.选择含有pLexA-X显蓝色，而相应的不含有插入DNA的空载pLexA显白色的克隆，扩增其在E.coliKC8中的甘油菌，按常规抽提质粒DNA，进行序列分析。10×DO（-His，-Trp，-Leu，-Ura）为不含His，Trp，Leu，Ura等成份的10×Dropout溶液。每1000ml溶液中含有下列成份，用ddH2O配制后保存于4℃。（1）L-IsoleucineL-异亮氨酸300mg（2）L-ValineL-缬氨酸1500mg（3）Adenine腺嘌呤200mg（4）L-ArginineHClL-精氨酸200mg（5）L-LysineHClL-赖氨酸盐酸盐300mgL-MethionineL-甲硫氨酸200mg（7）L-PhenylalanineL-苯丙氨酸500mgL-ThreonineL-苏氨酸2000mg（9）L-TyrosineL-酪氨酸300mg20×氨基酸储存液每100ml溶液中分别含有下列成份，配制后保存于4℃。20×HisL-HistidineL-组氨酸40mg20×TrpL-TryptophanL-色氨酸40mg20×LeuL-LeucineL-白氨酸200mg20×UraUracil尿嘧啶40mg酵母转化缓冲液:缓冲液体积缓冲液配制10×TE100mlTris1.21g;EDTANa22H2O0.37g;ddH2O80ml;盐酸调pH7.5;ddH2O定容10×LiAc100mlLiAc2H2O10.20g;ddH2O50ml，冰醋酸调pH7.5;ddH2O定容50%PEG100mlPEG335050.0g;ddH2O定容其它缓冲液:缓冲液体积缓冲液配制TE1000mlTris1.21g;EDTANa22H2O0.37g;ddH2O800ml;盐酸调pH;ddH2O定容STE1000mlNaCl5.84g;Tris1.21g;EDTANa22H2O0.37g;ddH2O800ml;盐酸调pH8.0;ddH2O定容[详细]

  2018-10-12 10:00

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• 特殊组织DNA的提取及鉴定

  特殊组织DNA的提取及鉴定[详细]

  2015-08-27 00:00

  其它

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• HEIDENHAIN海德汉长度计在度量行业有广泛的应用

  HEIDENHAIN海德汉长度计长度计海德汉的增量式长度计能在一个长的测量范围内提供很高的精度。这些坚固耐用的长度计根据不同的应用有不同的产品类型。他们在度量行业有广泛的应用，多点测量站、测试设备检测和位置测量装置。选择海德汉公司的长度计的理由。测量范围大海德汉公司的长度计测量范围有12mm、25mm、30mm、60mm或100mm多种选择，因此其一台测量设备可以测量非常不同的零件，避免频繁地更换价格昂贵的量块或模板。高精度海德汉公司的长度计所具有的高精度还体现它的全量程上。无论是测量10mm还是100mm的零件，其实际尺寸的测量精度是完全一样的。海德汉公司的长度计具有高重复性特点，可用于比较测量，例如用于大批量生产。坚固耐用海德汉公司的长度计是为工业环境而制造的。它具有长期始终如一的高精度和出色的温度稳定性。所以，可以广泛应用于生产设备和机床中。[详细]

  2018-11-07 14:16

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• 海德汉编程原理及技巧

  德国海德汉编码器概述：海德汉是在49个国家都有分支机构、公司，可以说是高质量的标准，海德汉是记录通过认证，在ISO9001品质系统模型和授权作为德国校准服务（dkd）检查站为单位的长度和角度。只要产品的使用寿命和可循环再造的设计上，一方面谨慎使用资源和优化能源消费对其他先决条件的环境宣言，在遵守ISO14001系列标准。海德汉研制生产光栅尺、角度编码器、旋转编码器、数显装置和数控系统。海德汉公司的产品被广泛应用于机床、自动化机器，尤其是半导体和电子制造业等领域。德国海德汉编码器型号系列：610系列632系列674系列,675系列,684系列,685系列，510系列312系列,560系列,562系列，540系列,541系列525系列，310系列,320系列ERN1381.001-2048ID:313453-06,313453-02ERN1381.020-2048ID:385489-06ERN1381-2048ID:385489-56ERN1381.040-2048ID:608290-01ERN1381.062-2048ID:385489-08,385489-07ERN1387.001-2048ID:312215-14ERN1387.001-2048ID:312215-02,312215-66ERN1387-2048ID:373787-N6ERN1387.02-2048ID:385487-01ERN1387.020-2048ID:385487-03ERN1185.003-2048ID:316278-58ROD320.020-1000ID:538723-05ROD320.005-1000ID:291843-04ROD320.020-2000ID:291843-06R0D320.005-2500ID:291843-01ROD320.001ROD320.002ID:254847-05ROD320.005ROD320.007ROD323ROD436ROD323.001-1024ID:237974-01ROD323.031-1024ID:377101-5RRON350-2048ID:254426-04ROD431.001-2048ID:317393-03ROD431-1024,ID:317393-52ROD431.001-1024ID:309288-01,ROD431.020-1024ID:538727-02ROD431-1024317393-02,317393-52,538727-52ROD320.005-2500ID:291843-01ROD320-2500,ID:538723-01ERN1381.020-2048ID:385489-06EQN1125.030EQN1325.020-2048ID:538234-01EQN1325ID:312214-53EQN1325.001-2048ID:312214-16EQN1325-2048ID:538234-51EQN1325-2048ID:515385-01EQN1325.048-2048ID:655251-01EQN425ID:312214-16ERN1331-1024ID:538727-55ERN1331-1024ID:538727-53,538727-52ERN1331-2048ID:538727-56ERN1331.051-1024ID:317393-05ERN1331.051-1024ID:317393-55ERN1331.061-1024ID:538727-05ERN1331.052-1024ERN1331.062-2048ID538727-56ERN1331.051-1024ID:375272-02ERN1381-2048ERN1387-2048ROD431-1024ROD320-2500/5000/2000ROD430-5000376834-3SERN1331-1024ID:538727-55ERN1331-2048ERN1331.051-1024,ID:317393-05ERN1331.051-1024,ID:317393-55ERN1331.061-1024,ID:538727-05ERN1331.052-1024ERN1331.062-2048ID538727-56ERN1331-1024,ID:538727-52ERN1331.051-1024ID:375272-02ROD431.001-2048ID:317393-03ROD431-1024ID:317393-52ROD431.001-1024ID:309288-01,ROD431.020-1024ID:538727-02ROD430ROD430.030威斯特（上海）传感器仪表有限公司本公司以“优质产品，优质服务，以客为先"的宗旨，为客户提供原装正厂的优质产品，以合理的性价比，快捷的交货期，热情周到的服务，为客户提供高品质、经济耐用、品种齐全的产品，从而赢得客户的一致赞赏我们将不负客户对本公司的期望和厚爱，努力为广大客户提供优质的产品、良好的售后服务，努力成为Zyou秀的自动化设备供应商。本公司所有产品空运到达ZG！货期稳定！假一赔十!欢迎广大客户咨询！我们竭诚为您服务！[详细]

  2018-11-05 10:00

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• 节能马弗炉的来源

  节能马弗炉的来源马弗炉是英文Mufflefurnace翻译过来的。Muffle是包裹的意思，furnace是炉子，熔炉的意思。节能马弗炉在生活中的范围越来越广泛，在ZG的通用叫法有以下几种：电炉、电阻炉、茂福炉、马福炉。马弗炉是一种通用的加热设备.依据外观形状可分为箱式炉管式炉坩埚炉。马弗炉按国籍分有国产马弗炉和进口马弗炉。应用范围：（1）医药行业：用于药品的检验、医学样品的预处理等。（2）热加工、水泥、建材行业,进行小型工件的热加工或处理。（3）煤质分析：用于测定水分、灰份、挥发份、灰熔点分析、灰成分分析、元素分析。也可以作为通用灰化炉使用。（4）分析化学行业：作为水质分析、环境分析等领域的样品处理。也可以用来进行石油及其分析。设备特点由于采用新型陶瓷纤维炉膛，保温效果好，产品特点：炉体、智能控制器分体设计，美观、大方，炉门采用侧开门设计。采用两侧衬板式加热元件，便于更换炉丝，采用进口超高温发热体，抗氧化性能更加优异，大大增加使用寿命。采用陶瓷纤维绝热，大幅度的提高了升温速度，并减少了热能消耗，升温快:1000C°炉型由100C°升温至1000C°，小于30分钟，1700C°炉型由100C°升温至1700C°，小于90分钟与传统的马弗炉相比重量减轻1/2,升温速度提高1倍，重量轻:6升炉型仅重50公斤9升炉型仅重65公斤（总体重量）大大节约能源，寿命提高3.5倍；保温效果好，炉外表温度低，升温至1000C°，并保持1小时后外壳表面不烫手，避免烫伤。（约45-55C°根据使用环境定）采用进口温控仪表，全新数字显示，数字设定温度，智能控制输出，可减少视读和人为操作误差，大大提高工作效率。设有多种保护装置，提高了安全性及可靠性独立控制系统，方便维修更换炉体上开有排气孔（可根据用户要求增设气体保护进、排气空）效率高:作实验炉用时，可开进出风孔，加烟筒，有利于补进新鲜氧气，加速试验。可根据用户需要定做其他规格产品.各种非标管式炉、井式炉、箱式炉。上海凯朗仪器设备厂专业生产鼓风干燥箱、真空干燥箱、马弗炉、生化培养箱、二氧化碳培养箱、电热恒温培养箱、试验箱、恒温摇床、水槽、水浴锅等实验室设备。咨询电话：021-57180039[详细]

  2018-10-01 10:00

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