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技术干货 | 疼痛测试方法汇总

来源:深圳市瑞沃德生命科技股份有限公司 更新时间:2020-10-26 14:35:33 阅读量:1708

现代年轻人长时间处于固定的工作姿势,亚健康状态越来越严重,颈椎痛、腰肌劳损、偏头痛时有发生。作为科研人员,你可能会思索,疼痛感觉是如何被评估,被量级分析,被记录的?今天小编就给大家唠唠疼痛模型与常用的痛阈评估的实验方法。


疼痛是机体对外界伤害性刺激的感受,是一种报警系统,提示真实存在或潜在组织损伤的可能性。依据疼痛产生因素不同,可进行以下分类:


  ·  生理痛:动物伤害性感受阈测定的疼痛,可以通过观察动物对伤害性温度和机械刺激的逃避反应进行统计(如:抬足、甩尾、甩头、缩足,舔足)。

  ·  病理痛:分为急性病理痛和慢性病理痛(前者多由确定的损伤或炎症反应所致,当损伤痊愈或炎症消失时,疼痛即可消除。后者则多由难以消除的慢性炎症或神经病变所致,病程常迁延很久),可通过非刺激痛觉过敏行为,例如行走状态,表情评估等来观察。


痛觉测试方法分类


刺激性疼痛行为


VonFrey 试验

由生理学家 Maximilian von Frey 开发,是针对机械刺激中的针刺痛觉,评估小鼠和大鼠机械触摸疼痛的标准方法。电子Von Frey 系统因更能提高实验效率,而逐步应用广泛。相对于手动 Von Frey ,电子测痛仪可以连续施力,提供连续尺度的脚爪撤退阈值


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针刺测痛包


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电子测痛仪


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足底测试仪


Randall-Selitto 或 paw 压力测试

作为评估机械压力刺激反应阈值的工具而开发,通常被认为是一种机械痛觉过敏的测量方法。测试内容主要包括,在动物爪子或尾巴的表面,施加越来越大的机械力,直到动物退缩或叫出声。类似的,钳式测痛仪是使用镊子等器具,以线性标度在动物(大鼠或小鼠)中诱导可量化的机械刺激。

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爪压力测痛仪


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肢体压力测痛仪


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钳式测痛仪


哈格里夫斯试验(Hargreaves test)

用于量化小鼠和大鼠后爪辐射或红外热刺激的热阈值。将辐射源或红外线热源,置于动物下方并瞄准足底表面,动物从热刺激中,爪收缩所花的时间,被记录为收缩潜伏期。甩尾测试(D'Armor&Smith Test)是对啮齿动物尾部施加辐射热,基于动物对热刺激回避反应的潜伏期,进行测量。常用测痛仪器有红外足底测痛仪和甩尾测痛仪。


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红外足底测痛仪


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甩尾测痛仪


热板试验

由N.B. Eddy和D. Leimbach于1953年设计,经过改进后,可用于评估落在加热(或冷却)表面上,小鼠对足底温度刺激的反应时间。类似的热位置偏好测试和温度梯度测试,可以通过评估动物的温度偏好(舒适区)来研究疼痛阈值。除了冷热盘测痛仪和温度偏好测试仪外,面部疼痛测试仪可测试大小鼠三叉神经区域的热敏痛和机械刺激痛阈值。


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冷热盘测痛仪


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温度位置

偏好测试仪


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面部测痛仪


非刺激性疼痛行为


  ·  对动物表情进行连续帧率摄影,从中筛选露出大部分正脸的照片,根据表情的温和程度和面部动作进行评分。

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表情评估


  ·  通过静态承重或失能分析,测量动物整个后爪的重量分布。通常包括将动物置于倾斜的支架中,迫使后爪置于两个独立的压力传感器上。若同侧和对侧脚掌的重量分布不均匀,被认为是对痛觉感受程度的自然调节。使用双足平衡测痛仪和四足承重动态测试仪,可通过传感器记录动物脚掌的承重情况。

 

  ·  除此之外,动物在行走奔跑状态下的步态分析,也可用于疼痛研究。步态分析系统可以自动测量自由移动的啮齿动物(小鼠或大鼠)每只爪子承受的重量(例如动态承重),还可以获得随时间变化的力分布信息曲线,可用于研究镇痛、伤害感受,特别适合研究帕金森氏病、阿尔茨海默氏病、关节炎、脑或脊髓损伤等神经系统疾病。


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双足平衡测痛仪


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四足承重

动态测试仪


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步态记录

分析系统


以上就是常用的疼痛测试方法,了解更多产品信息请扫描下方二维码。

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参考文献

1.Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse(2010)


2.Activation of cyclin-dependent kinase 5 mediates orofacial mechanical hyperalgesia(2013)


3.Puerarin suppresses TRPV1, calcitonin gene-related peptide and substance P to prevent paclitaxel-induced peripheral neuropathic pain in rats(2019)


4.Spruce needle polyprenols protect against atorvastatin-induced muscle weakness and do not influence central nervous system functions in rats(2016)


5.Perturbing NR2B–PSD-95 interaction relieves neuropathic pain by inactivating CaMKII-CREB signaling(2017)


6.Alterations of voluntary behavior in the course of disease progress and pharmacotherapy in mice with collagen-induced arthritis(2019)


7.Neuroprotective effect of tanshinone IIA against neuropathic pain in diabetic rats through the Nrf2/ARE and NF-κB signaling pathways(2018)


8.Assessment of Mechanical Allodynia in Rats Using the Electronic Von Frey Test(2016)


9.Highly Predictive Objective Measurement of OA Joint Pain in Rat Using Bioseb Automated Dynamic Weight Bearing System(2017)


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