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国内首例大规模AAV生产案例分享

来源:Cytiva(思拓凡) 更新时间:2024-07-19 09:18:43 阅读量:254
导读:欢迎文末扫码获取更多海报信息


基因治疗可以说是近几年医药市场的热点话题。今年初,加拿大卫生部批准了辉瑞制药一款基于腺相关病毒(AAV)载体的基因疗法的上市。截止目前,全球已有54款基因药物的上市。FDA也多次表示,后续每年会有约上十种基因疗法上市。可以说,经过前面数十年的积累,近十年基因治疗药物迎来了密集上市增长期。


这其中,腺相关病毒(AAV)作为体内基因疗法最大的一个分支,占据了市场约50%的份额,这主要是得益于AAV病毒的一系列优点:

 1 

高安全性和极低免疫原性;

 2 

感染宿主范围广;

 3 

高组织嗜性;

 4 

感染扩散能力强;

 5 

体内表达时间长等优点。

因为AAV疗法的众多好处,可以预见,后续上市的AAV疗法将会越来越多。而且,AAV疗法的剂量需求也会越来越大。


图1:AAV的不同疗法的剂量需求


AAV的大规模的生产案例在国外早已有之,但是在国内的规模主要在50-500L,还没有做到2000L的大规模。今年初,由和元生物主导,协助的国内首例大规模生产(反应器XDR2000,培养规模1000L)顺利下线。可以说,这是国内基因治疗领域的一个里程碑事件,填补了国内的AAV大规模生产的技术空白。

对于大规模的AAV生产,可以说挑战还是非常多的,主要的有反应器工艺参数的放大,转染试剂的选择和用量、三质粒系统比例、MOI、转染混合物混合时间和转导时间等。在这里,我们结合国内外实际的放大生产经验,和大家探讨和分享AAV生产的参数放大,转染混合物配置,以及最后的生产结果等内容;


反应器工艺参数的放大


不管是对于微生物还是动物细胞,参数放大的关键都在于转速和通气,对于AAV生产用到的HEK293同样如此。不过HEK293细胞因为更加多样性,对于剪切力的耐受程度存在一定的差异。所以,在放大时要充分考虑小试的工艺数据。



1

转速放大


反应器搅拌速度关乎了细胞生长的太多方面,包括物料混合、氧传质、剪切力等。因此,在放大时,太快或者太慢,都不利于细胞的生长和产品的表达。


1)

转速放大常见的放大方式是通过P/V值来进行计算

一般中试规模和生产规模采用等P/V值进行放大,或者结合小试或供应商推荐的P/V值范围,得出一个转速范围。常见的动物细胞P/V值范围一般是在10-40W/m3。推荐的P/V值范围是在10-35W/m3。根据文献报道,一些HEK293在小玻璃罐罐中的 PV值达到60-230W/m3之间也没有太大影响。因此,P/V值范围可以结合多种信息综合考量



2)

转速剪切力考量

细胞剪切力的来源主要有两个方面,搅拌桨叶对于细胞的直接作用,搅拌过程中产生的小漩涡对细胞的杀伤。

搅拌桨叶的直接作用,可以用叶尖线速度进行表示,一般来说HEK293细胞的叶尖线速度在2m/s内比较合适。随着细胞水平的提高,现在的叶尖线速度处于2-3m/s,也没有太大影响。

Tip Speed  (m/s)= π*d*n

搅拌桨叶的间接作用,可以用Kolmogorv漩涡长度来表示。搅拌产生的漩涡直径如果和细胞直径接近,就会对细胞产生绞杀作用。因此,可以通过公式或建模的方式,确定某一个转速条件下,Kolmogorv漩涡长度和细胞直径一致的体积大概有多少。例如细胞直径通常为0-20um之间,Kolmogorv漩涡长度位于0-20um对于细胞有杀伤力。


图2:Kolmogorv漩涡长度建模


3)

转速的混合时间考量

一般HEK293的混合时间位于2min以内,可以保证细胞和营养物质之间达到一个很好的混合效果。可以利用混合时间,确定转速和P/V值的最小值。

总的来说,转速的设计可以适当偏小一些,避免产生剪切力的影响。结合以上几个方面,基本可以锁定放大后的转速值。



2

通气速率和通气方式的确定


HEK293不像CHO细胞那样具有很高的细胞培养密度,对于反应器传质要求和通气量要求都不是太高。而且,HEK293对于微泡通气一般会比较敏感。因此在通气策略上,可以全程用大泡孔径进行通气,或者前期用大泡通气,后期加入少量的微泡进行通气。

空气通气速率这块,可以用表观通气速率和等VVM的方式来找到折中的空气通气速率。HEK293密度一般不会太高,需要的氧气量不大,氧气直接和DO进行关联通气即可。


转染混合物


常见的转染混合物有脂质体,磷酸钙,阳离子聚合物等。转染混合物的选择,以及转染混合物与DNA的比例,都在一定程度上影响着病毒的滴度和空壳率。因此,在小试时,可以结合不同转染试剂的产量以及使用成本进行综合选择。

在大规模生产时,转染混合物的挑战主要在于转染试剂和DNA之间既需要充分混合,混合后需要立即传输到反应器中,避免转染试剂-DNA颗粒物保持时间过长影响DNA的转导效果。部分文献报道,常规转染复合物浓度下,20min后滴度下降到最佳滴度的约90%。


图3:PEI-DNA保持时间和滴度,空壳率的关系


转染试剂和DNA的混合可以使用多种方式进行混合。目前小规模的常见混合方式大都是采用WAVE反应器,WAVE反应器低的剪切力和高混合效果,比较适用于转染试剂的混合。同时,根据既有条件,在大规模生产时平行使用多台WAVE能和小试保持一致,或者通过大的反应器进行混合也是一种不错的选择。转染混合物的传输在大规模阶段会是限制因素,建议在小试可以多摸索一些条件,建议大规模传输时间不要超过30min。


图4:转染试剂混合推荐设备


生产结果


如下是根据和元生物公开的Poster资料,截取的这批 XDR2000反应器的培养参数和最终结果。我们能发现,XDR2000的细胞生长过程,代谢过程,病毒滴度基本和XDR200和小试具有可比性,达到较好的生产结果。详细的培养过程,可以参考和元生物公开分享的Poster资料。


表1:XDR2000工艺参数


表2:XDR2000代谢参数


表3:XDR2000生产结果



解决方案


解决方案助力和元生物大规模AAV生产顺利实施。和元生物可提供AAV载体一站式整体解决方案,拥有AAV NeO新型载体筛选平台、CytoNeO高产细胞株筛选平台以及成熟全面的大规模AAV载体生产平台。灵活的生产规模(50-2000L)可持续为客户提供多血清型、高滴度、超低内毒素的高品质AAV载体。通过DMF备案的质粒系统加速项目申报与审批进程,为客户的AAV基因治疗产品从临床前研究到商业化生产提供全方位的支持。


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(海报待审核通过后即会发送)


参考文献

B.Olden, H.Seo, R.Barnes, et al., Stabilizing DNA–PEI complexes improves scalability of suspension lentiviral viral vector and AAV processes. Cell & Gene Therapy Insights 2022; 8(8), 985–992.A Robust upstream process for AAV8 production scaled up from 15 Liters to 1000 Liters. Shixiong Dong, Hairui Yang, Han Gao, Ying Wang, Zehui Wang, Zhen He, Houliang Wei, Qingrui You, Guodong Jia. OBIO Technology (Shanghai) Corp., Ltd. Shanghai, China


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