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多能干细胞培养:细胞外基质怎么选?一篇搞定!

来源:赛默飞世尔科技生命科学产品 更新时间:2025-09-19 16:45:20 阅读量:74
导读:三大细胞外基质(Geltrex Flex, VTN, Laminin-521)的选择与应用

PSC 培养需要一整套兼容的培养基、基质和传代方法,以支持细胞的健康生长和保持多能性。Thomson 等人在 1998 年首次获得人胚胎干细胞 (ESCs)[1],当初的培养体系非常复杂,需使用经有丝分裂灭活处理的小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)作为饲养层,并使用添加胎牛血清(FBS)的培养基进行培养。这项开创性工作成为了开发各种 PSC 培养系统的起点。此后研究人员在简化培养系统方面付出了巨大的努力,最终开发出来了不依赖于饲养层的培养基和基质用于培养 PSCs。

在进行人多能干细胞(hPSC)培养时,您是否还在为选择哪种细胞外基质而纠结?本文将带你深入了解目前主流的三种hPSC无饲养层基质:



Geltrex Flex 基质



在hPSC基础研究领域,来源于小鼠EHS肿瘤的基底膜提取物(BME)是经典的细胞外基质。Gibco Geltrex Flex 基质即属于此类,其主要成分包括层粘连蛋白、IV型胶原、巢蛋白和硫酸肝素蛋白聚糖。

经hESC认证的Geltrex Flex基质可用于人胚胎干细胞(hESCs)和诱导多能干细胞(iPSCs)的贴壁与维持培养。每批均使用iPSC和H9 hESC进行了至少五代培养测试,并减低生长因子含量,以确保hESC/iPSC研究的可靠性与一致性。

图1. Geltrex Flex 支持 hESC 人胚胎干细胞的的高效生长、多能性维持:使用 StemFlex 培养基、分别包被 Geltrex Flex、Geltrex 和 C品牌的培养体系中, BS3C PSC 维持自我更新因子的表达。



玻连蛋白(Vitronectin, VTN-N)



基质胶可有效支持人胚胎干细胞的长期增殖,但其成分是复杂的小鼠源蛋白混合物,是培养体系变异性的来源之一。

与标准的基底膜提取物 (BMEs) 不同,玻连蛋白 (VTN-N) 是一种重组人蛋白,可为人多能性干细胞 (PSCs) 的无滋养层培养提供成分限定的表面。Gibco VTN-N变体基于 James Thomson 实验室设计,已被证明在支持人多能干细胞贴壁和存活方面优于野生型玻连蛋白[2]。与Essential 8和Essential 8 Flex 培养基结合使用,可以建立成分确定且不含外源性成分的培养系统。

玻连蛋白 (VTN-N) 已被证明可支持多能干细胞生长超过 50 代且无任何核型异常迹象,并能维持多能干细胞分化为所有三个胚层谱系的能力。

为了确保供应的稳定性和可持续性,赛默飞现已将RUO Vitronectin 的生产线成功转移至位于立陶宛维尔纽斯的生产基地,并同步启用新货号 A400457 和 A400458,其产能将进一步得到提升。

图2. 使用VTN-N培养的iPSCs高表达多能性标志物(如OCT4、SOX2、TRA-1-60等): 利用CytoTune-iPS仙台病毒重编程试剂盒将BJ成纤维细胞诱导为诱导多能性干细胞 (iPSCs),使用 Essential 8培养基 (A1517001) 和 0.5 μg/cm2 VTN-N培养八代以上。进行细胞染色,检测其多能性的 (A) 细胞内标记物和 (B) 表面标记物。



人重组层粘连蛋白(rhLaminin-521)



无论是成分复杂但经典的基质胶,还是成分明确且高效的Vitronectin,都为hPSC培养提供了优秀的解决方案。然而,在面对一些极具挑战性的实验场景时,研究人员需要更强大的“利器”,那就是接下来要介绍的人重组层粘连蛋白(rhLaminin-521)。

Laminin-521是天然干细胞微环境的关键基底膜蛋白,由胚胎的内部细胞团中的hPSC表达和分泌,可以支持hPSC的稳定扩增以及随后的细胞谱系特化。

Gibco rhLaminin-521经证实可在压力条件下提升 PSC 的存活,即使没有小分子 Rho 相关蛋白激酶 (ROCK) 抑制剂存在[3],如用于重编程、PSC 从较丰富的培养基到精简型培养基的切换,以及荧光激活细胞分选 (FACS) 后的单细胞克隆生长等,为您的hPSC培养提供卓越的性能。

综上所述,我们为大家整理了如下基质选择场景:

总而言之,没有“最好”的基质,只有“最合适”的基质。Geltrex Flex是经济可靠的经典之选,Vitronectin是成分明确体系的不二法门,而Laminin-521则能助您攻克最难的单细胞克隆与基因编辑挑战。



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表注:RUO (Research Use Only); CTS (Cell Therapy Systems)

参考文献:

1. Thomson JA, Itskovitz-Eldor J, Shapiro SS et al. (1998) Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science 282(5391):1145-1147.

2. Chen G, Gulbranson DR, Hou Z et al. (2011) Chemically defined conditions for human iPSC derivation and culture. Nat Methods 8:424-429.

3. Rodin S, Antonsson L, Hovatta O et al. (2014) Monolayer culturing and cloning of human pluripotent stem cells on Laminin-521-based matrices under xeno-free and chemically dened conditions. Nat Protoc 9(10):2354-2368.

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