马年说马 | CytoFLEX如何赋能马医学研究

在古希腊神话中，半人马象征着智慧与力量，守护着自然的奥秘。而在现代马医学研究中，科学家们同样需要一双能够穿透表象的“智慧之眼”——当一个个细胞从激光束前飞速掠过，当数据在屏幕上如瀑布般流淌，流式细胞术正以其独特的方式，为我们揭示马匹生理与病理的细胞级真相。

在关注繁殖效率的同时，科学家们也开始关注环境污染物对生殖细胞的直接伤害。

2026年发表于《Theriogenology》的一项研究，利用流式细胞术和共聚焦显微镜，首次证实了纳米塑料能够进入活的马精子内部（Dindo et al., 2026）。研究发现，直径仅30纳米的塑料颗粒能穿透精子细胞膜，积聚在顶体后区和线粒体所在的中段。

通过CytoFLEX S流式细胞分析仪的定量分析，研究者观察到：

这项研究首次揭示了纳米塑料对哺乳动物成熟精子的直接毒性作用，为理解环境污染物对动物生殖健康的影响提供了全新的视角，同时也展示了CytoFLEX在评估生殖细胞功能损伤中的关键作用。

免疫系统是一支由多种细胞组成的庞大军队，流式细胞术让研究人员能够清晰地“看见”这支军队的兵力配置和战斗状态。

2025年12月发表在《Veterinary Quarterly》上的一项研究，利用CytoFLEX流式细胞分析仪成功建立了马匹单核细胞来源巨噬细胞的分离与极化方法（Meeremans et al., 2025）。

研究中，流式细胞术发挥了核心验证作用：

这一研究为马匹运动损伤（如腱炎、关节病）的机制研究和干细胞治疗开发提供了关键的人源化疾病模型支撑。

在马的临床诊断领域，流式细胞术的应用已有二十余年历史。早在2002年，Davis等人的综述就系统阐述了该技术在马免疫介导性贫血、血小板减少症等疾病诊断中的应用价值（Davis et al., 2002），为后续的临床转化奠定了重要基础。

流式细胞术可用于评估中性粒细胞的吞噬能力和髓过氧化物酶含量（Franck et al., 2005），后者已被确认为马肠道、骨科和肺部疾病的敏感生物标志物（Schwarz et al., 2012）。

当马匹出现不明原因贫血或血小板减少时，通过检测红细胞和血小板表面结合的免疫球蛋白（Wilkerson et al., 2000；McGurrin et al., 2004），流式细胞术可以帮助区分免疫介导的溶血性贫血和免疫介导的血小板减少症（Davis et al., 2002；Eberhart et al., 2024），为精准用药提供依据。不过，据Evans（2022）综述指出，目前尚未有实验室常规提供马免疫介导性贫血和血小板减少症的流式检测服务，该领域仍有待进一步开发。

流式细胞术在马临床诊断中的另一重要应用是造血系统肿瘤（淋巴瘤和白血病）的免疫分型。目前北美地区有2家实验室为马提供商业化的流式检测服务。与犬猫相比，马淋巴瘤和白血病亚型的预后信息仍相对有限，但随着更多肿瘤样本通过流式获得鉴定，该技术的临床价值预计将持续提升。需要注意的是，部分造血系统肿瘤（如浆细胞瘤、肥大细胞瘤）目前尚无法通过流式明确诊断，主要原因是缺乏足够且稳定的细胞标记物（Evans, 2022）。

未来展望

1. Strassner, F.M., Demattio, L., Siuda, M., Malama, E., Muffels, G., & Bollwein, H. (2025). Relationships Between Metabolism of Cryopreserved Equine Sperm Determined by the Seahorse Analyzer and Sperm Characteristics Measured by Flow Cytometry and Computer-Assisted Analysis of Motility. Veterinary Sciences, 12(12), 1109.

2. Dindo, S., Tovar-Pascual, L., Baldassarro, V.A., Bucci, D., Mislei, B., Spinaci, M., & Ortiz-Rodriguez, J.M. (2026). Nanoplastics internalization impairs mitochondrial activity in equine sperm. Theriogenology, 250, 117711.

3. Meeremans, M., Devriendt, B., Bairiot, S., Van Poucke, M., Peelman, L., Demeyere, K., Meyer, E., Van Vlierberghe, S., & De Schauwer, C. (2025). Equine monocyte-derived macrophages revisited: isolation and comprehensive characterization of pro- versus anti-inflammatory polarisation. Veterinary Quarterly, 45(1), 1-23.

4. Davis, E.G., Wilkerson, M.J., & Rush, B.R. (2002). Flow cytometry: clinical applications in equine medicine. Journal of Veterinary Internal Medicine, 16(4), 404-410.

5. Franck, T., et al. (2005). Development of an enzyme-linked immunosorbent assay for specific equine neutrophil myeloperoxidase measurement in blood. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 17(5), 412-419.

6. Schwarz, B.C., van den Hoven, R., & Schwendenwein, I. (2012). Diagnostic value of the neutrophil myeloperoxidase index in horses with systemic inflammation. The Veterinary Journal, 191(1), 72-78.

7. Wilkerson, M.J., et al. (2000). Isotype-specific antibodies in horses and dogs with immune-mediated hemolytic anemia. Journal of Veterinary Internal Medicine, 14(2), 190-196.

8. McGurrin, M.K., Arroyo, L.G., & Bienzle, D. (2004). Flow cytometric detection of platelet-bound antibody in three horses with immune-mediated thrombocytopenia. Journal of the American Veterinary Medical Association, 224(1), 83-87.

9. Eberhart, N., et al. (2024). Proof of concept - Detection of erythrocyte-bound immunoglobulin G (IgG) in an anemic foal using flow cytometry. Tier?rztliche Praxis Ausgabe K: Kleintiere / Heimtiere, 52(02), 130.

10. Evans, S.J.M. (2022). Flow Cytometry in Veterinary Practice. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 52(3), 1-12.