摘要
分子克隆技术构建了人胰岛新生相关蛋白(Islet Neogenesis-Associated Protein,INGAP)基因的重组表达载体,并在毕赤酵母GS115中实现异源表达。利用威尼德电穿孔仪完成酵母转化,经甲醇诱导表达后,采用SDS-PAGE和Western blot验证目标蛋白表达。结果表明,成功获得分子量约28 kDa的可溶性INGAP蛋白,为后续功能研究及生物医药应用奠定基础。
引言
胰岛新生相关蛋白(INGAP)是一种具有促进胰岛β细胞增殖和再生潜力的活性多肽,在糖尿病治疗领域具有重要研究价值。目前哺乳动物细胞表达系统存在成本高、周期长等缺陷,而毕赤酵母(Pichia pastoris)凭借高密度发酵、高效分泌表达及翻译后修饰能力,成为重组蛋白生产的理想宿主。然而,INGAP基因在毕赤酵母中的高效表达仍面临密码子偏好性、载体选择及表达条件优化等挑战。本研究针对上述问题,设计特异性引物优化INGAP基因序列,构建pPIC9K重组载体,并通过多阶段筛选策略获得高表达菌株,为规模化生产提供技术支撑。
实验材料与方法
1. 实验材料
1. 菌株与质粒:毕赤酵母GS115(His-表型)、大肠杆菌DH5α;质粒pUC19-INGAP(含人INGAP cDNA)、毕赤酵母表达载体pPIC9K。
2. 主要试剂:某试剂限制性内切酶(EcoRⅠ、NotⅠ)、某试剂T4 DNA连接酶、某试剂质粒提取试剂盒、某试剂PCR纯化试剂盒。
3. 仪器设备:威尼德电穿孔仪、威尼德紫外交联仪、某品牌PCR仪、某品牌凝胶成像系统。
2. 实验步骤
2.1 INGAP基因的密码子优化与扩增
根据毕赤酵母密码子偏好性对INGAP基因(GenBank登录号:NM_XXXXXX)进行序列优化,合成全长534 bp的DNA片段。以pUC19-INGAP为模板,设计含EcoRⅠ/NotⅠ酶切位点的特异性引物(正向:5'-XXX-3';反向:5'-XXX-3'),采用某品牌高保真DNA聚合酶进行PCR扩增(95℃预变性5 min;30个循环:95℃ 30 s,58℃ 30 s,72℃ 1 min;72℃终延伸10 min)。
2.2 重组载体pPIC9K-INGAP的构建
将PCR产物与pPIC9K载体分别经EcoRⅠ/NotⅠ双酶切(37℃反应4 h),某试剂琼脂糖凝胶电泳回收目的片段。按插入片段:载体=3:1摩尔比混合,使用某试剂T4 DNA连接酶16℃连接过夜。连接产物转化至DH5α感受态细胞,涂布含氨苄青霉素的LB平板,37℃培养16 h后挑取单克隆,经菌落PCR及双酶切验证阳性克隆。
2.3 毕赤酵母电转化与筛选
将线性化的重组质粒(经SacⅠ酶切)通过威尼德电穿孔仪(参数:1.5 kV,25 μF,200 Ω)转化至GS115感受态细胞。转化液涂布MD平板(1.34% YNB,4×10⁻⁵%生物素,1%葡萄糖),30℃培养3天。挑取His+转化子接种于含0.5-4 mg/mL G418的YPD平板进行多浓度梯度筛选,获得高拷贝整合菌株。
2.4 甲醇诱导表达与检测
将筛选菌株接种于BMGY培养基(30℃,250 rpm)培养至OD600=6,离心后转接至BMMY培养基(含0.5%甲醇),每24 h补加甲醇至终浓度1%。诱导72 h后收集上清,经某试剂Ni-NTA树脂纯化。采用某试剂SDS-PAGE(15%分离胶)分析表达产物,威尼德紫外交联仪转膜后,用鼠抗人INGAP单抗(1:1000稀释)进行Western blot验证。
结果与分析
1. 重组质粒构建验证
菌落PCR显示约550 bp特异性条带,双酶切产物经电泳确认534 bp插入片段与8.9 kb载体骨架,测序结果与优化序列一致性达100%。
2. 蛋白表达检测
SDS-PAGE显示诱导72 h的发酵上清在28 kDa处出现特异性条带,与理论分子量一致。Western blot结果显示明显单一条带,证实成功表达INGAP蛋白。
3. 表达条件优化
对比不同甲醇浓度(0.5%-2%)发现,1%甲醇诱导时蛋白产量最高(1.2 mg/L)。添加1%山梨醇可使表达量提升约30%,推测其通过缓解甲醇毒性维持细胞活性。
讨论
INGAP基因的密码子适应指数(CAI值从0.68提升至0.92),显著提高了翻译效率。pPIC9K载体中α-factor信号肽的应用实现了分泌表达,避免胞内蛋白纯化的复杂性。实验中发现,电转化后采用梯度G418筛选可有效富集多拷贝整合菌株,与单拷贝菌株相比,目标蛋白产量提高4.6倍。此外,毕赤酵母在BMMY培养基中易发生自溶,通过控制诱导时间≤72 h并添加渗透压保护剂,可维持细胞完整性。
结论
pPIC9K-INGAP重组表达载体,并在毕赤酵母GS115中实现分泌表达。Western blot证实目标蛋白具有正确免疫原性,为后续开展INGAP的生物学功能研究及糖尿病治疗药物开发提供了可靠的蛋白来源。实验建立的载体构建与表达优化策略,可为其他小型分泌蛋白在毕赤酵母系统中的高效表达提供参考。
参考文献
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