自 2012 年首次亮相以来,CRISPR 技术凭借其高效精准的特性,已在基因功能研究、药物靶点筛选、遗传疾病治疗、癌症研究以及作物育种等多个领域取得突破性成果,成为推动生命科学发展的核心技术之一。
图1. CRISPR-Cas9介导的基因编辑机制[1]
然而,在实际实验操作过程中,众多研究者常常遭遇各类技术难题,导致实验进度受阻。CRISPR 实验中最为常见的痛点主要包括以下几方面:
细胞毒性高:转染后细胞存活率低,难以获取足量且有效的实验样本,直接影响后续研究开展;
编辑效率低:目标位点的编辑成功率低,阳性克隆筛选困难,耗时耗力;
脱靶风险高:非目标位点易出现随机编辑情况,严重影响实验结果的准确性与可靠性,可能导致研究结论出现偏差。
深入探究这些痛点的根源,不难发现其与 Cas 蛋白的质量息息相关。纯度不达标的 Cas 蛋白易残留核酸酶、内毒素等杂质,正是引发细胞毒性高、编辑效率低、脱靶风险高等问题的核心原因[3]。
针对上述痛点,我司依托翌圣发酵与纯化工艺开发平台、酶分析及质控平台,并结合UCF.ME 超洁净酶生产平台,以严苛标准打造高纯度 Cas 蛋白系列产品,通过多维度、全方位的系统化质控流程,从源头保障产品品质。
以下为核心产品 Cas9 Nuclease(Cat#14701ES)的详细参数,其各项指标均展示了严格质控下的卓越品质:
Cas9 Nuclease产品性能数据展示
A:体外切割测试:3批次体外切割活性均达98%以上。
B:体内基因敲除,敲除效率与进口品牌一致。
图2. Cas9 Nuclease体外切割活性及基因敲除效率结果
除核心 Cas9 蛋白外,翌圣生物还构建了覆盖基因编辑全流程的完整解决方案,产品体系贯穿 CRISPR 核心组件制备至效果检测全环节,全方位满足不同科研场景的多样化需求。
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参考文献
[1] Westermann L, Neubauer B, K?ttgen M. Nobel Prize 2020 in Chemistry honors CRISPR: a tool for rewriting the code of life. Pflugers Arch. 2021 Jan;473(1):1-2.
[2] The Nobel Prize in Chemistry 2020, Retrieved October 7, 2020, from https://www.nobelprize.org/prizes/chemistry/.
[3] Pacesa M, Pelea O, Jinek M. Past, present, and future of CRISPR genome editing technologies[J]. Cell, 2024, 187(5): 1076-1100.
[4] Marraffini LA, Sontheimer EJ. CRISPR interference: RNA-directed adaptive immunity in bacteria and archaea. Nat Rev Genet. 2010;11(3):181-190.
[5] Makarova KS, Wolf YI, Iranzo J, et al. Evolutionary classification of CRISPR-Cas systems: a burst of class 2 and derived variants. Nat Rev Microbiol. 2020;18(2):67-83.
[6] Pickar-Oliver A, Gersbach CA. The next generation of CRISPR-Cas technologies and applications. Nat Rev Mol Cell Biol. 2019;20(8):490-507.
[7] Jiang F, Doudna JA. CRISPR-Cas9 Structures and Mechanisms. Annu Rev Biophys. 2017;46:505-529.
翌圣生物
翌圣生物科技(上海)股份有限公司成立于2014年,是一家聚焦生命科学产业链上游核心原料,从事核苷酸、蛋白、细胞和类器官四大品类生物试剂的研发、生产与销售的高新技术企业。公司兼备核心技术自主研发和规模化生产能力,核心产品数量达数千种,覆盖分子克隆、qPCR、NGS、体外转录、抗体、蛋白纯化及分析、细胞培养、转染、报告基因检测和类器官等多种系列,广泛应用于生命科学研究、诊断检测和生物医药等领域。
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