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《PNAS》重磅:细胞形态与基底刚度共同决定心肌收缩功能,HCells 水凝胶模块助力精准复现病生理环境。

来源:北京心动康达信息技术有限公司 更新时间:2025-09-19 09:15:20 阅读量:45
导读:《PNAS》重磅:形态刚度定收缩。HCells精准复现!



01
微环境决定收缩力的新证据
在心血管研究中,如何在体外真实再现心肌细胞的功能状态,一直是科学家们努力解决的问题。发表在 PNAS 的研究揭示了一个关键规律:心肌细胞的收缩力和成熟度,不仅与分子机制密切相关,更受到外部微环境的直接影响。研究团队通过在图案化几何中将心肌细胞限定为长轴矩形形态,并将其培养在不同刚度的水凝胶基底上,结果发现,当细胞在约 10 kPa 的“生理刚度窗口”下保持纵向排列时,牵引力输出、肌原纤维连续性、肌节缩短效率和钙信号传播均达到最佳;而偏软或偏硬的环境则会削弱这些功能。这一发现把“形状与刚度”推到心肌细胞功能研究的核心位置,并为疾病建模与药物筛选提供了全新的切入点(doi: 10.1073/pnas.1508073112.)。
02
HCells:从概念验证到标准化体系

然而,这类实验设计在传统条件下并不容易复现。科研人员若要手工制备不同刚度的水凝胶并维持图案化形态的稳定,往往耗时费力,且难以实现标准化。HCells 高通量多模态心肌细胞功能检测系统有效解决了这一难题,将培养条件与功能检测深度整合,使“形状 × 刚度”的研究思路从概念验证转化为可重复、可推广的常规实验。通过标准化耗材与自动化流程,原本繁琐的微环境调控被简化为研究人员可以直接调用的实验模块,大幅提升了实验的一致性与可操作性。

  • 可调刚度(2–90 kPa):10 kPa 复现生理最佳窗口,可模拟多种病生理状态

  • 精准形态控制:图案化基质诱导细胞长轴排列,重现最佳形状,避免随意性

  • 高通量单细胞分析:每孔 ≥50000 单元,提升统计效能

03
HCells:一体化的多模态功能检测
在完成标准化培养之后,HCells 的优势进一步体现在功能检测环节。系统能够在同一细胞上连续获得牵引力钙瞬变肌节动力学三大维度的数据,使“形状—刚度—功能”之间的关系得到完整的量化。
牵引力显微测试揭示心肌细胞兴奋-收缩耦合的力学基础

牵引力



钙瞬变成像揭示心肌细胞兴奋-收缩耦合的信号机制

钙瞬变



肌节运动分析揭示心肌细胞兴奋-收缩耦合的结构动力

肌节运动

牵引力钙瞬变肌节运动——当这些数据叠加在一起时,科研人员不仅能够重现论文中的“生理最佳窗”效应,还能在不同刚度和形状条件下全面追踪功能变化。这意味着研究不再局限于单一指标,而是能够实现结构、力学和电生理的多维联测,建立起从外部微环境到功能输出的完整证据链。
多参数精准量化
全面解析兴奋-收缩耦合全过程
04
HCells:从小规模探索到系统性研究
更重要的是,HCells 将这些实验带入了真正高通量的范畴。自动化的视野导航、AI 识别和巡航采集功能,让系统每小时可检测超过数百个细胞,从而保证研究具备足够的样本量来支撑统计学结论。配合精确的温控和气体调节,科研人员不仅可以观察瞬时收缩表现,还能开展长时程的药物干预或病理模拟。这种从培养条件到功能检测的全流程一体化设计,使得研究实现了从概念探索到疾病建模的自然过渡,同时也完成了从单一指标观察到多模态功能联测的跨越。由此,心肌病机制研究和药物筛选得以进入一个更可重复、更高效、更系统化的阶段。
自动化视野导航、AI识别与巡航采集,每小时检测数百细胞,确保样本量支撑统计结论。
05
结语:用 HCells 把“形状 × 刚度”变成日常实验
PNAS的研究揭示了心肌细胞功能的一个关键真相:收缩力不仅是分子和基因的产物,更深受外部形状与刚度的约束。HCells 系统正是将这一理念落地为标准化实验路径的工具,让科研人员能够在常规实验中轻松重现“形状 × 刚度”的效应,同时获取牵引力、钙瞬变和肌节功能的多维数据。对于关注心肌病机制、药物筛选和病理建模的团队而言,这意味着研究不再停留在零散验证,而是真正进入了系统化探索的新阶段。


- End -

彩蛋分享

PNAS论文全揭秘

这篇 PNAS 的研究以 hPSC-CMs 为模型,系统性地证明了外部微环境对单细胞收缩功能的决定性作用。通过图案化几何与可控基底刚度,研究者揭示了两个核心规律:其一,形态约束驱动肌原纤维沿长轴对齐,从而显著提升收缩力与功能一致性;其二,存在一个接近 10 kPa 的“生理刚度窗口”,在该范围内细胞的力学输出与结构完整性最优,而偏软或偏硬的条件都会导致力学衰减与肌原纤维损伤。进一步的功能检测表明,在形态与刚度双重优化下,细胞不仅收缩力增强,还在钙信号传播、线粒体分布及动作电位等方面展现出更成熟的表型。这一系列结果串联起“外形—力学—结构—功能”的因果链条,阐明了心肌细胞在单细胞层面实现成熟和高效收缩的基本条件。

从整体来看,这项工作不仅为心肌发育和心肌病理机制研究提供了坚实证据,也为体外疾病建模与药物筛选建立了方法学基础。研究告诉我们,单细胞的功能状态并非孤立存在,而是与其力学环境紧密耦合;通过调控形态与刚度,就能够在实验室中精确重建心肌细胞的病生理状态。这一发现为后续探索心肌疾病的发生发展提供了可复制的模型,也为干预性研究指明了方向。


01

  • 方法利用 Matrigel 微图案与可测牵引力的水凝胶,把 hPSC-CMs(人多能干细胞来源心肌细胞)限制为不同长宽比(1:1–7:1)的形态。

  • 结果在相同细胞面积条件下,显微图像显示细胞形态可控;肌动蛋白成像表明肌原纤维排列随长宽比变化;牵引力显微显示最大牵引力分布与细胞几何密切相关。

  • 结论微图案培养不仅能塑造细胞外形,还能工程化地调控其力学输出。


02

方法:比较不同长宽比心肌细胞的肌原纤维取向与收缩力;利用 Lifeact 标记测量肌节缩短。

结果:细胞纵横比升高(特别是 7:1)时,收缩总力 Σ|Fc| 显著上升;肌节缩短幅度更大;肌原纤维主要沿长轴运动;对齐指数随长宽比增加而升高。

结论:肌原纤维沿长轴有序排列能提升收缩力,细胞形态是决定力学性能的关键因素。


03

方法:在不同基底刚度(10 与 35 kPa)以及外加拉伸条件下检测单细胞力学输出与肌原纤维完整性。

结果:10 kPa 基底上收缩力更高,而 35 kPa 上肌原纤维出现断裂、功能下降;外加约 14% 拉伸时,肌原纤维破裂、力学输出降低;功率表现为先升高再下降的曲线。

结论:基底刚度与拉伸水平直接影响肌原纤维稳定性和收缩表现,存在一个“最优力学窗口”。


04

方法:比较 7:1 图案化细胞与未图案化细胞的钙信号传播、线粒体分布与电生理特性。

结果:7:1 细胞钙流沿长轴有序传播,而未图案化细胞钙信号呈各向同性;7:1 细胞线粒体分布更接近成熟心肌细胞;动作电位幅度、静息电位与最大上升速率均更成熟。

结论:图案化培养不仅改善了收缩力学,还促进了钙动力学、代谢与电生理的整体成熟,使 hPSC-CMs 更接近成人心肌表型。



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