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技术解析 | Spatial-DMT 实现甲基化与转录组 “同片共测”

来源:翌圣生物科技(上海)股份有限公司 更新时间:2026-02-27 16:15:30 阅读量:65
导读:技术解析 | Spatial-DMT 实现甲基化与转录组 “同片共测”

背景

 现有技术瓶颈

· DNA 甲基化(5mC、5hmC)是调控基因表达和细胞谱系分化的关键表观遗传标记,但传统单细胞甲基化分析缺失组织空间构象,无法解析细胞间微环境调控机制。

· 现有空间多组学技术仅能检测转录组、染色质可及性或蛋白质,缺乏直接检测 DNA 甲基化的方法,导致表观遗传调控与基因表达的空间互作研究受限。

? 研究方法

· 开发一种可在同一组织切片上同步捕获 DNA 甲基化和转录组的空间组学技术,实现近单细胞分辨率的双模态分析。

· 揭示小鼠胚胎发育和脑功能中,DNA 甲基化(mCG、mCH)与基因表达的空间协同调控规律,为组织生物学研究提供新工具。



Spatial-DMT 技术流程


Spatial-DMT 整合微流控原位条形码、酶促甲基化转化和高通量测序技术。

wps_doc_1.jpg

图1 Spatial-DMT实验流程

wps_doc_0.jpg

图2 Spatial-DMT文库结构

1


实验前准备


? 样本制备

  1. 选取目标组织(如小鼠胚胎、脑),制备 7-10 μm 厚的冷冻切片,贴附于多聚赖氨酸包被的载玻片上,避免组织脱落。

  2. 若为新鲜样本,需经 CO?麻醉后快速灌注冷 DPBS,脑组织需嵌入 OCT 化合物中干冰速冻,确保核酸完整性。

? 试剂与设备准备

  1. 核心试剂:1% 甲醛(固定用)、0.1N HCl(核小体破坏)、Tn5 转座酶及缓冲液、生物素标记的 poly-dT 引物(含 UMI 和通用接头)、空间条形码 A/B(各 50 种序列)、TET2/APOBEC 酶(EM-seq 转化用)、链霉亲和素磁珠、splint 连接适配器、高保真 DNA 聚合酶。

  2. 专用设备:微流控芯片(通道宽度 20/50 μm)、PCR 仪、荧光显微镜(10× 物镜,用于芯片对齐)、高通量测序仪(Illumina NovaSeq 6000/X Plus)。

2


组织预处理

(关键:保护核酸完整性)



? 固定与透化

将冷冻切片在 37℃孵育 1 分钟快速解冻,用含 0.05 U/μL RNase 抑制剂的 1% 甲醛室温固定 10 分钟,随后用 1.25 M 甘氨酸淬灭 5 分钟,去除过量甲醛。

? 清洗与 permeabilization

用 DPBS-RI(含 RNase 抑制剂)洗涤组织 2 次,再用 0.5% Triton X-100+RNase 抑制剂室温透化 30 分钟,增强试剂穿透力。

? 核小体破坏

加入 0.1N HCl 室温处理 5 分钟,破坏组蛋白与 DNA 的结合,提升 Tn5 转座酶可及性,随后用含 BSA 和 Tween 20 的洗涤缓冲液洗涤 2 次,中和酸性环境。

3


双模态分子捕获

(核心:同步捕获 DNA 与 mRNA)



? DNA 转座与片段化

  1. 配制转座混合液(含组装好的 Tn5 转座酶、Tagmentation 缓冲液、洋地黄皂苷、Tween 20、RNase 抑制剂),均匀覆盖组织,37℃孵育 60 分钟。

  2. 更换新鲜转座混合液,进行第二轮转座(60 分钟,37℃),平衡 DNA 产量与 RNA 降解风险,将基因组 DNA 片段化至合适长度。

  3. 加入 40 mM EDTA 室温孵育 5 分钟终止转座,用 缓冲液洗涤 1 次。

? mRNA 原位逆转录

  1. 配制 RT 反应液(含 5×RT 缓冲液、PEG-8000、dNTPs、Maxima H Minus 逆转录酶、生物素标记的 poly-dT 引物、RNase 抑制剂),覆盖组织后室温孵育 30 分钟,再 45℃恒温 90 分钟完成 cDNA 合成。

  2. 反应后用缓冲液洗涤,去除未结合的游离引物。

4


空间条形码标记

(核心:赋予分子空间坐标)



? 条形码 A 连接

  1. 将微流控芯片对齐组织感兴趣区域(ROI),用自制丙烯酸夹具固定,通过荧光显微镜拍摄明场图像确认定位。

  2. 条形码 A 与连接接头预先退火,配制含 T4 DNA 连接酶、缓冲液、Triton X-100 的连接混合液,通过真空驱动流入芯片通道,37℃孵育 30 分钟,使条形码 A 共价连接到 DNA 和 cDNA 的通用接头。

  3. 去除芯片,用缓冲液洗涤,干燥载玻片。

? 条形码 B 连接

  1. 更换垂直方向的微流控芯片,重复上述定位与固定步骤,将退火后的条形码 B 连接混合液流入通道,37℃孵育 30 分钟,形成 “条形码 A + 条形码 B” 的二维空间编码(共 2500 个像素)。

  2. 去除芯片,用去离子水洗涤,压缩空气吹干,再次拍摄明场图像用于后续空间定位校准。

5


核酸分离与纯化


? 逆转交联与组织裂解:

在 ROI 区域加入含 0.4 mg/mL 蛋白酶 K、1% SDS、EDTA 的逆转交联混合液,58-60℃孵育 2 小时,随后 60℃振荡孵育过夜,彻底释放核酸。

? 核酸提取:

收集裂解液,用 柱式DNA纯化试剂盒纯化,洗脱得到含 gDNA 和 cDNA 的混合液。

? 双模态分离:

将混合液与预洗涤的链霉亲和素磁珠室温孵育 1 小时,利用生物素 - 链霉亲和素相互作用富集 cDNA(磁珠结合相),gDNA 则留在上清液中,实现两者分离。

6


文库构建

(gDNA 甲基化文库与 cDNA 转录组文库)



? gDNA 甲基化文库构建(EM-seq 转化核心)

  1. 酶促转化:取 gDNA 上清液,加入 TET2 反应混合液(含 TET2 酶、氧化增强剂、Fe2?溶液)37℃孵育 1 小时,将 5mC/5hmC 氧化为 5caC;随后加入 APOBEC 酶 37℃孵育 3 小时,将未修饰的 C 脱氨基为 U,修饰 C 则被保护。

  2. splint 接头:将转化后 gDNA 热变性(95℃3 分钟),快速冰浴 2 分钟,加入预退火的 SLP5 适配器和连接混合液(含 T4 PNK、T4 连接酶、PEG 8000),37℃孵育 45 分钟,引入 PCR 接头,65℃20 分钟灭活酶活性。

  3. PCR 扩增:用 耐尿嘧啶聚合酶进行 13-19 轮扩增,引物含 N501 和修饰后的 N70X-HT(C→T 替换,避免脱氨基干扰),扩增后用 0.8×磁珠纯化,得到甲基化文库。

? cDNA 转录组文库构建

  1. 模板切换反应将结合 cDNA 的磁珠洗涤后,重悬于含模板切换寡核苷酸(TSO)、Maxima 逆转录酶的反应液中,室温孵育 30 分钟、42℃孵育 90 分钟,延长 cDNA 链并引入接头序列。

  2. Tagmentation 与扩增用 酶切 试剂盒对 cDNA 进行片段化,加入index引物进行 12 轮 PCR 扩增,通过 0.7×磁珠纯化,获得含空间条形码的转录组文库。

7


文库质量控制


 用 Agilent Bioanalyzer D5000 检测文库片段大小(目标范围 200-500 bp),Qubit 定量浓度,确保文库浓度≥1 ng/μL。

 验证甲基化文库转化效率:检测甲基化 - free linker 序列,确保 > 99% 的 C 成功转化为 U;转录组文库需验证无 Poly A/T 或 TSO 序列污染。

8


测序与数据解码


文库采用 Illumina NovaSeq 6000/X Plus 进行 150 bp 双端测序,测序深度需满足:每个像素平均 35 万 - 75 万条 reads,确保 CpG 覆盖度≥13 万 / 像素、基因检出数≥1800 / 像素。

数据预处理:通过条形码 A/B 组合解码空间坐标,用 STARsolo 映射 RNA 读段、BISCUIT 处理 DNA 甲基化读段,最终通过 MethSCAn(识别 VMRs)和 Seurat(聚类分析)生成双模态空间图谱。


Spatial-DMT 创新点和科学价值


突破现有空间组学技术的局限,首次实现 DNA 甲基化与转录组的空间双模态共分析,拓展了空间组学的研究维度。

采用 EM-seq 酶促转化替代亚硫酸氢盐处理,减少 DNA 损伤,同时保留 mCG 和 mCH 修饰信息,且无需区分 5mC 和 5hmC(二者共同被保护免受脱氨基)。

 揭示了甲基化调控的空间特异性:同一甲基化修饰在不同组织、细胞类型中对基因表达的调控方向(正 / 负相关)存在差异,强调了空间语境的重要性。

 为胚胎发育研究提供新视角:通过时空整合分析,清晰展示了甲基化介导的细胞分化轨迹(如少突胶质细胞从亚大脑皮层向大脑皮层迁移)。

 阐明了非 CpG 甲基化(mCA)在脑功能中的调控作用,为神经元发育和脑疾病研究提供新靶点。


Spatial-DMT 关键试剂清单


翌圣生物原料解决方案


类别

Spatial-DMT使用的试剂

翌圣生物

作用

对应产品名称

对应产品货号

分子酶或试剂盒

T4 DNA Ligase/T4 DNA Ligase Reaction Buffer

Hieff NGS? Rapid DNA Ligase Module

12999ES

用于 barcode 连接

NEBNextò Enzymatic Methyl-seq 

Conversion Module

DNA Enzymatic methyl-Conversion Kit

12213ES

酶法转化

Nextera XT DNA Library Preparation Kit

Hieff NGS? C112P1 Fast Tagment DNA Library Prep Kit for Illumina? (for 1 ng)

13468ES

转座酶切建库

VeraSeq Ultra DNA polymerase

Hieff Canace? Plus High-Fidelity DNA Polymerase 高保真DNA聚合酶

12928ES

耐U高保真DNA扩增

Proteinase K

Proteinase K Solution 蛋白酶K溶液(20 mg/mL, RNase-Free, DNase-Free)

10412ES

降解组织蛋白,释放核酸

NEBNext High-Fidelity 2X PCR 

Master Mix

2× Ultima HF Amplification Mix /高保真DNA文库扩增模块

13344ES

高保真 DNA 扩增反应

Kapa Hotstart HiFi ReadyMix

2× Hieff Canace? Pro Amplification Mix

12980ES

启动动高保真文库扩增

SYBR Green I Nucleic Acid Gel Stain


YeaGreen Nucleic Acid Gel Stain (10,000× in Water)

10204ES

核酸染料

DNA Clean & Concentrator-5

MolPure? PCR Purification Kit   PCR产物纯化试剂盒

19106ES

DNA纯化

Tn5 Transposase - unloaded/Tagmentation Buffer (2x)

Tn5 Transposase (10 U/μL)

14524ES

用于基因组 DNA 片段化,插入测序接头

Maxima H Minus Reverse 

Transcriptase (200 U/μL)

Hifair UCF. ME? Advanced Reverse Transcriptase (200 U/μL)

14614ES

以 mRNA 为模板合成 cDNA

dNTP mix

dNTP Mix (10 mM each)

10124ES

DNA 合成等反应的原料

RNase Inhibitor (40 U/ml)

RNase Inhibitor

14672ES

抑制 RNA 酶活性,防止 mRNA 降解

SPRI beads

Hieff NGS? DNA selection Beads

12601ES

纯化 DNA/RNA 文库,去除杂质

Dynabeads MyOne C1

Hieff NGS? Cap Beads  链霉亲和素捕获磁珠

12248ES

捕获生物素标记的核酸

生化试剂

Formaldehyde solution(甲醛溶液)

4%多聚甲醛固定液

60536ES

用于组织样本固定,保持细胞形态和分子完整性

Glycine(甘氨酸)

Glycine 甘氨酸

60112ES

淬灭过量甲醛,终止固定反应

NaCl(氯化钠)

Sodium Chloride 氯化钠

60372ES

维持缓冲液渗透压和离子强度

MgCl?(氯化镁)

无水氯化镁

719460ES

为 Tn5 转座酶、DNA 连接酶等提供反应条件

Digitonin(洋地黄皂苷)

Digitonin洋地黄皂苷

54004ES

温和通透细胞膜,保留核内分子完整性

Sodium dodecyl sulfate(SDS,十二烷基硫酸钠)

SDS

20106ES

裂解细胞膜和核膜,释放核酸

HEPES pH 7.5(HEPES 缓冲液)

HEPES hemisodium salt HEPES半钠盐

715389ES

维持实验体系 pH 稳定

EDTA Solution pH 8.0(EDTA 溶液)

EDTA, Free Acid 乙二胺四乙酸

60126ES

螯合镁离子,终止依赖金属离子的酶促反应(如转座、连接)

Bovine Serum Albumin (BSA)(牛血清白蛋白)

牛血清白蛋白,诊断级别

36102ES

稳定酶活性,减少非特异性结合

Triton X-100(曲拉通 X-100)

Triton X-100

20107ES

增强细胞膜通透性,辅助试剂渗透


参考文献

[1] Lee C N, Fu H, Cardilla A, et al. Spatial joint profiling of DNA methylome and transcriptome in mammalian tissues[J]. bioRxiv, 2025: 2025.07.01.662607. https://doi.org/10.1101/2025.07.01.662607




翌圣生物


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