01
Fig.1 建立了整合代谢、电活动和 Ca2? 动态的 β 细胞模型框架,为后续计算提供结构基础。
该图展示了 β 细胞模型的总体结构。模型整合了质膜上的多种离子通道电流(包括 ICaV、IKDr、ITRPM、ISOC、IKCa(BK)、IKATP、IKCa(SK)、IbNSC、IPMCA、INaCa、INaK),内质网(ER)的钙动力学(由 SERCA 泵摄取 Ca2?,Jrel 释放 Ca2?),以及葡萄糖浓度 [G] 调控下线粒体 ATP 合成过程。ATP 由 NADH (Re) 供能,通过氧化磷酸化(Jop)生成,并通过 Ca2? 依赖与非依赖途径消耗(Jc,ATP)。箭头方向代表相应方程计算值的正方向。02
Fig.2 显示葡萄糖浓度决定 β 细胞从静息到爆发再到持续放电的转变。
展示模型在 6、8、12、16、20 mM 不同葡萄糖浓度下的稳态活动。每一行依次显示膜电位 (Vm)、ATP(黑)、MgADP(红)、胞内 Na? 浓度 ([Na?]i)、胞内 Ca2? 浓度 ([Ca2?]i)。在 6 mM 时细胞静息;8–16 mM 时出现稳定的周期性振荡;20 mM 时持续放电。
03
Fig.3 表明 SERCA 泵抑制会降低振荡频率并放大 Ca2? 峰值,揭示其在维持钙节律中的关键作用。
该图在 11 mM 葡萄糖下展示膜电位、胞质 [Ca2?]i、ER 内 [Ca2?]ER 及 Ca2? 通量(Jrel、JSERCA、INaCa、IPMCA)随时间变化。在 130 s(灰条)时将 SERCA 泵通量 PSERCA 从 0.096 降至 0.0192 amole/ms(20%)以模拟药物 thapsigargin 抑制效应。抑制后,Ca2? 振荡频率降低、幅度增大,ER 储钙减少。
04
Fig.4 比较了 8 与 16 mM 葡萄糖下的离子流分布,揭示葡萄糖依赖的电活动增强机制。
展示 8 mM (A) 与 16 mM (B) 葡萄糖下 β 细胞爆发期与间歇期的离子电流变化。上方为 Vm, 下方为各离子电流轨迹(颜色对应图例)。灰条表示间歇期。不同时间尺度用于展示电流细节。
05
Fig.5 定量揭示各电流在爆发节律形成中的相对贡献,说明葡萄糖通过能量与离子通道双调控机制控制膜电活动。
显示 8 mM (A) 与 16 mM (B) 葡萄糖下各主要离子流在间歇期的贡献(VL 分析)。顶部:VL(红)与 Vm(黑)的时间变化;中部:各电流的瞬时贡献 c(正值促进去极化,负值促超极化);底部:INaK 的分量被分解为 ATP/MgADP 依赖部分与 Na?i 依赖部分。
06
Fig.6 揭示单个动作电位中各离子流的时间协同,说明 Ca2?、K?、Na? 电流共同塑造β细胞节律性放电。
在 8 mM 葡萄糖下,展示连续两个动作电位的 VL(红)与 Vm(黑)变化,以及 ICaV、IKDr、IKCa(BK)、INaCa 等主要电流的瞬时贡献。可见 VL 变化始终先于 Vm,说明离子流的综合效应是爆发驱动力。
07
Fig.7 表明葡萄糖对 Na?/K? 泵的抑制仅引发瞬时增强,细胞通过离子稳态迅速恢复正常节律。
在 8 mM 葡萄糖下,于 t≈80 s 引入“葡萄糖对 Na?/K? 泵的抑制”(灰条,Fglu 从 1 → 0.552)。随后立即出现更长的爆发期和更高的 Ca2? 峰;随着 [Na?]i 累积,INaK 恢复,节律回归原状。
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